2003, 2004, 2005, 2006, 2006-2010, 2007, 2008, 2009, 2011, 2011-2015, 2013, 2014, Akvaristika, Atlasy, Časová línia, Do roku 2005, Organizmy, Príroda, Ryby, TOP, Živočíchy

Malý atlas rýb

Hits: 70608

V atla­se rýb je 356 dru­hov a foriem


In the fish atlas, the­re are 356 spe­cies and forms.


Im Fis­chat­las gibt es 356 Arten und Formen.

A

  • Acant­hi­cus adonis
  • Aequ­idens pulcher
  • Allo­to­ca dugesi
  • Allo­to­ca goslinei
  • Alto­lam­pro­lo­gus cal­vus Black Pearl White
  • Alto­lam­pro­lo­gus cal­vus Black Pectoral
  • Alto­lam­pro­lo­gus cal­vus Chaitika
  • Alto­lam­pro­lo­gus compressiceps
  • Aman­tit­la­nia nigrofasciata
  • Ame­ca splendens
  • Ancis­trus cf. cirrhosus
  • Ancis­trus cf. cirr­ho­sus Albino
  • Ancis­trus sp. Gold Long Fin
  • Ancis­trus sp. L213
  • Aphy­o­cha­rax paraguayensis
  • Aphy­o­se­mi­on australe
  • Aphy­o­se­mi­on poliaki
  • Apis­to­gram­ma agassizii
  • Apis­to­gram­ma cacatuoides
  • Apis­to­gram­ma hongsloi
  • Apis­to­gram­ma nijsseni
  • Apis­to­gram­ma trifasciata
  • Apis­to­gram­ma viejita
  • Aplo­che­i­lus line­a­tus gold
  • Apte­ro­no­tus albifrons
  • Archo­cen­trus multispinosus
  • Archo­cen­trus spilurus
  • Aris­toc­hro­mis christyi
  • Asty­anax fasciatus
  • Astro­no­tus ocellatus
  • Astro­no­tus ocel­la­tus Red Oscar
  • Ata­e­ni­obius toweri
  • Aulo­no­ca­ra jacobfreibergi
  • Aulo­no­ca­ra jacobf­re­i­ber­gi Eureka
  • Aulo­no­ca­ra jacobf­re­i­ber­gi New Blue Orchid
  • Aulo­no­ca­ra male­ri maleri
  • Aulo­no­ca­ra mamelea
  • Aulo­no­ca­ra maulana
  • Aulo­no­ca­ra may­lan­di maylandi
  • Aulo­no­ca­ra sp. Fire Fish
  • Aulo­no­ca­ra sp. Fire Fish Iceberg
  • Aulo­no­ca­ra sp. Lwanda
  • Aulo­no­ca­ra sp. mar­me­la­de OB
  • Aulo­no­ca­ra sp. Mbenji
  • Aulo­no­ca­ra ste­ve­ni Hongi
  • Aulo­no­ca­ra stu­artg­ran­ti Chilumba
  • Aulo­no­ca­ra stu­artg­ran­ti Ngara
  • Aulo­no­ca­ra stu­artg­ran­ti Rubin Red

B

  • Bar­bus semifasciolatus
  • Bar­bus tetrazona
  • Bar­bus tet­ra­zo­na albino
  • Belo­n­tia signata
  • Belo­ne­sox belizanus
  • Bet­ta albimarginata
  • Bet­ta enisae
  • Bet­ta pugnax
  • Bet­ta sp. Mahachai
  • Bet­ta splendens
  • Bora­ras maculatus
  • Bora­ras urophthalmoides
  • Botia loha­cha­ta
  • Bra­chy­rap­his roseni
  • Bro­chis splendens

C

  • Cal­loc­hro­mis macrops
  • Cal­loc­hro­mis melanostigma
  • Caras­sius auratus
  • Cari­no­tet­ra­odon travancoricus
  • Celes­ticht­hys margaritatus
  • Cic­hla­so­ma festae
  • Cic­hla­so­ma octofasciatum
  • Cle­ith­ra­ca­ra maronii
  • Coli­sa labiosa
  • Copa­dic­hro­mis azureus
  • Copa­dic­hro­mis bor­le­yi Kadan­go Red Fin
  • Copa­dic­hro­mis mloto
  • Copa­dic­hro­mis pleurostigma
  • Copel­la arnoldi
  • Cory­do­ras aeneus
  • Cory­do­ras arcuatus
  • Cory­do­ras julli
  • Cory­do­ras olgae
  • Cory­do­ras paleatus
  • Cory­do­ras pale­a­tus Albino
  • Cory­do­ras panda
  • Cory­do­ras pygmaeus
  • Cory­do­ras sp. Albin
  • Cory­do­ras sp. Vene­zu­e­la Gold Stripe”
  • Cory­do­ras sterbai
  • Cros­so­che­i­lus siamensis
  • Cryp­to­he­ros sajica
  • Cte­noc­hro­mis horei
  • Cte­no­lu­cius hujeta
  • Cte­no­po­ma acutirostre
  • Cyno­ti­la­pia pulpican
  • Cyp­ho­ti­la­pia gib­be­ro­sa Bangwe
  • Cyp­ho­ti­la­pia gib­be­ro­sa Burundi
  • Cyp­ric­hro­mis lep­to­so­ma Jum­bo Yel­low Kekese
  • Cyp­ric­hro­mis lep­to­so­ma Malasa
  • Cyp­ric­hro­mis lep­to­so­ma Molire
  • Cyp­ric­hro­mis lep­to­so­ma Mpulungu
  • Cyp­ric­hro­mis lep­to­so­ma Tricolor
  • Cyp­ric­hro­mis sp. lep­to­so­ma Jum­bo Kitumba”
  • Cyp­ric­hro­mis nigripinnis
  • Cyr­to­ca­ra moorii

D

  • Danio fran­kei GM
  • Danio rerio GM
  • Der­mo­ge­nys pusillus
  • Deva­rio sondhii
  • Dia­ne­ma urostriata
  • Dic­ros­sus filamentosus
  • Dic­ros­sus maculatus
  • Dimi­di­oc­hro­mis compressiceps
  • Dis­ti­cho­dus affinis

E

  • Enan­ti­opus mela­no­ge­nys Sambia
  • Enne­a­cam­pus ansorgii
  • Enne­a­cant­hus gloriosus
  • Enne­a­cant­hus chaetodon
  • Epi­pla­tys annulatus
  • Eret­mo­dus cyanos­ti­cus Mabilibili
  • Exo­don paradoxus

F

  • Fun­du­lo­pan­chax gardneri
  • Fun­du­lo­pan­chax sjo­es­ted­ti Dark Form

G

  • Gam­bu­sia affinis
  • Gar­ra rufa
  • Geop­ha­gus brasiliensis
  • Girar­di­nicht­hys multiradiatus
  • Girar­di­nus falcatus
  • Girar­di­nus metallicus
  • Girar­di­nus metal­li­cus Yellow
  • Girar­di­nus metal­li­cus Black
  • Gym­no­co­rym­bus ternetzi
  • Gyri­no­che­i­lus aymonieri

H

  • Hap­loc­hro­mis CH44
  • Hap­loc­hro­mis kribensis
  • Helos­to­ma teminckii
  • Hete­ran­dria formosa
  • Hemic­hro­mis lifalili
  • Hemi­gram­mus anisitsi
  • Hemi­gram­mus bleheri
  • Hemi­gram­mus erythrozonus
  • Hemi­gram­mus rhodostomus
  • Hemir­hamp­ho­don pogonognathus
  • Heros seve­rus
  • Heros sp. Gold
  • Hyp­hes­sob­ry­con amandae
  • Hyp­hes­sob­ry­con bentosi
  • Hyp­hes­sob­ry­con callistus
  • Hyp­hes­sob­ry­con columbianus
  • Hyp­hes­sob­ry­con erythrostigma
  • Hyp­hes­sob­ry­con herbertaxelrodi
  • Hyp­hes­sob­ry­con sweglesi
  • Hyp­se­le­ca­ra temporale

CH

  • Cha­li­noc­hro­mis bifrenatus
  • Cha­li­noc­hro­mis ndhoboi
  • Cha­pa­licht­hys pardalis
  • Cha­pa­licht­hys peraticus
  • Cha­ra­co­don audax

I

  • Ily­o­don whitei

J

L

  • Labe­ot­rop­he­us tre­wa­va­sae Rosa
  • Labe­ot­rop­he­us tre­wa­va­sae Mar­ma­la­de Cat
  • Labi­doc­hro­mis caeruleus
  • Labi­doc­hro­mis sp. hongi
  • Lam­pro­lo­gus multifasciatus
  • Lam­pro­lo­gus ornatipinnis
  • Lam­pro­lo­gus ocel­la­tus Gold
  • Lam­pro­lo­gus speciosus
  • Lepi­di­olam­pro­lo­gus nkambae
  • Lepo­ra­cant­hi­cus jose­li­mae L264
  • Lepo­ri­nus fasciatus
  • Leth­ri­nops mbasi
  • Lich­noc­hro­mis acuticeps
  • Limia domi­ni­cen­sis
  • Limia mela­no­gas­ter
  • Limia nig­ro­fas­cia­ta
  • Limia tri­dens
  • Lioso­ma­do­ras oncinus
  • Lori­ca­ria parnahybae
  • Lori­ca­ria simillima

M

N

  • Nan­na­ca­ra anomala
  • Nan­na­ca­ra taenia
  • Nan­nos­to­mus eques
  • Nan­nos­to­mus marginatus
  • Nan­nos­to­mus mortenthaleri
  • Nema­tob­ry­con lacortei
  • Nema­tob­ry­con palmeri
  • Neohe­te­ran­dria elegans
  • Neolam­pro­lo­gus brichardi
  • Neolam­pro­lo­gus buescheri
  • Neolam­pro­lo­gus fal­ci­cu­la Cygnus
  • Neolam­pro­lo­gus leleupi
  • Neolam­pro­lo­gus tretocephalus
  • Nim­boc­hro­mis linni
  • Nim­boc­hro­mis livingstoni
  • Nim­boc­hro­mis venustus
  • Nomor­hamp­hus lie­mi liemi
  • Nomor­hamp­hus rex
  • Not­hob­ran­chius guentheri

O

  • Opht­hal­mo­ti­la­pia ventralis
  • Ore­oc­hro­mis mozambicus

P

  • Para­cyp­ri­chor­mis nigripinnis
  • Para­che­i­ro­don axelrodi
  • Para­che­i­ro­don axel­ro­di Gold Albino
  • Para­che­i­ro­don innesi
  • Para­che­i­ro­don simulans
  • Parac­hro­mis managuense
  • Pec­kol­tia L 134
  • Pete­nia splendida
  • Phal­licht­hys quadripunctatus
  • Phal­licht­hys tico
  • Phal­lo­ce­ros caudimaculatus
  • Phal­lo­ce­ros cau­di­ma­cu­la­tus reticulatus
  • Phe­na­co­gram­mus interruptus
  • Pla­ci­doc­hro­mis electra
  • Pla­ci­doc­hro­mis milomo
  • Pla­ci­doc­hro­mis phe­no­chi­lus Lupingo
  • Poeci­lia caucana
  • Poeci­lia reticulata
  • Poeci­lia reti­cu­la­ta La Playo
  • Poeci­lia reti­cu­la­ta Savage
  • Poeci­lia sphenops
  • Poeci­lia velifera
  • Poeci­lia wingei
  • Poeci­lia win­gei Blue
  • Poeci­li­op­sis gracilis
  • Poeci­li­op­sis prolifica
  • Pria­pel­la intermedia
  • Pri­onob­ra­ma filigera
  • Pse­udoc­re­ni­lab­rus nicholsi
  • Pse­udoc­re­ni­lab­rus phi­lan­der dispersus
  • Pse­udo­mu­gil furcatus
  • Pse­udo­mu­gil gertrudae
  • Pse­udo­mu­gil signifer
  • Pse­udo­pla­tys­to­ma fasciatum
  • Pse­udosph­ro­ne­mus dayi
  • Pse­udosph­ro­ne­mus dayi sp. burma
  • Pse­udot­rop­he­us acei
  • Pse­udot­rop­he­us camaleo
  • Pse­udot­rop­he­us demasoni
  • Pse­udot­rop­he­us elon­ga­tus Mpanga
  • Pse­udot­rop­he­us fainzilberi
  • Pse­udot­rop­he­us polit
  • Pse­udot­rop­he­us saulosi
  • Pse­udot­rop­he­us socolofi
  • Pse­udot­rop­he­us soco­lo­fi albino
  • Pse­udot­rop­he­us wil­liam­si Blue Lips
  • Pte­rop­hyl­lum altum
  • Pte­rop­hyl­lum scalare
  • Pte­rop­hyl­lum sca­la­rae Peru Altum
  • Pun­tius conchonius
  • Pun­tius pentazona
  • Pun­tius semifasciolatus
  • Pun­tius tet­ra­zo­na Green
  • Pygo­cen­trus nattereri

R

  • Ras­bo­ra borapetensis
  • Ras­bo­ra heteromorpha
  • Reno­va oscari

S

  • Scia­e­noc­hro­mis fryeri
  • Scia­e­noc­hro­mis fry­eri Iceberg
  • Scle­ro­mys­tax barbatus
  • Sco­licht­hys greenwayi
  • Sicy­dium salvini
  • Skif­fia francesae
  • Skif­fia multipunctata
  • Stu­ri­so­ma nigrirostrum
  • Symp­hy­so­don aequifasciatus
  • Symp­hy­so­don aequ­ifas­cia­tus Mal­bo­ro Red
  • Sync­ros­sus hymenophysa
  • Syno­don­tis eupterus
  • Syno­don­tis ocellifer
  • Syno­don­tis schoutedeni
  • Syno­don­tis velifer

T

  • Tate­urn­di­na ocellicauda
  • Tet­ra­odon schoutedeni
  • Tha­y­eria boehlkei
  • Tho­richt­hys ellioti
  • Tho­ra­coc­hro­mis brauschi
  • Tri­cho­gas­ter leerii
  • Tri­cho­gas­ter trichopterus
  • Tri­cho­gas­ter tri­chop­te­rus Gold
  • Tri­cho­gas­ter tri­chop­te­rus sumatranus
  • Tri­chop­sis schalleri
  • Tri­chop­sis vittata
  • Trop­he­ops sp. Chilumba
  • Trop­he­us bri­char­di Malagarasi
  • Trop­he­us duboisi
  • Trop­he­us dubo­isi Maswa
  • Trop­he­us moorii Gol­den Kazumba
  • Trop­he­us moorii Chimba
  • Trop­he­us moorii Kasanga
  • Trop­he­us moorii Kato­to Red Dorsal
  • Trop­he­us moorii Kato­to Red Dor­sal wild form
  • Trop­he­us moorii Moliro
  • Trop­he­us moorii Moli­ro Red
  • Trop­he­us moorii Mpulungu
  • Trop­he­us moorii Murago
  • Trop­he­us moorii Mura­go wild form
  • Trop­he­us moorii Ndole
  • Trop­he­us moorii Ndo­le Red
  • Trop­he­us sp. black Bemba
  • Trop­he­us sp. Ikola

U

  • Uaru amp­hia­cant­ho­ides

V

  • Valen­cia letour­ne­uxi pinios
  • Vie­ja bifasciata
  • Vie­ja synspila

X

  • Xenen­to­don cancila
  • Xeno­ti­la­pia ornatipinnis
  • Xeno­op­ho­rus captivus
  • Xenop­hal­lus umbratilis
  • Xeno­ta­ca eiseni
  • Xeno­ta­ca eise­ni San Marco
  • Xeno­ta­ca variata
  • Xeno­ta­e­nia resolanae
  • Xip­hop­ho­rus andersi
  • Xip­hop­ho­rus birchmanni
  • Xip­hop­ho­rus continens
  • Xip­hop­ho­rus cortezi
  • Xip­hop­ho­rus couchianus
  • Xip­hop­ho­rus evelynae
  • Xip­hop­ho­rus helleri
  • Xip­hop­ho­rus hel­le­ri Albino
  • Xip­hop­ho­rus montezumae
  • Xip­hop­ho­rus maculatus
  • Xip­hop­ho­rus malinche
  • Xip­hop­ho­rus nezahualcoyotl
  • Xip­hop­ho­rus pygmaeus
  • Xip­hop­ho­rus signum
  • Xip­hop­ho­rus variatus
  • Xip­hop­ho­rus sp. Guate­ma­la”

Z

Use Facebook to Comment on this Post

Ryby atlas

2006-2010, 2007, 2008, 2009, Atlasy, Časová línia, Mäkkýše, Organizmy, Príroda, Živočíchy

Vodné ulitníky a lastúrniky

Hits: 27347

V nádr­žiach sa väč­ši­nou cho­va­jú ulit­ní­ky – Gas­tro­po­da, v men­šej mie­re aj las­túr­ni­ky Lamel­lib­ran­chia (Bival­via). Ďal­šie trie­dy Monop­la­coph­ho­ra, Scap­ho­po­da Cep­ha­lo­po­da (hla­vo­nož­ce) nie. Pat­ria však medzi mäk­ký­še. V tej­to akva­ris­tic­kej sek­cii uva­žu­jem iba o vod­ných dru­hoch, sucho­zem­ské sú pred­me­tom skôr teraristiky.

Pojem sli­má­ky je čas­to pou­ží­va­ný. Nepou­ží­va sa cel­kom správ­ne, mali by sme vra­vieť o ulit­ní­koch, dokon­ca aj o las­túr­ni­koch. Ulit­ní­ky plnia v akvá­riu aj fun­kciu kon­zu­men­tov nespot­re­bo­va­nej hmo­ty – hni­jú­cich lis­tov, nespot­re­bo­va­ných zbyt­kov potra­vy, uhy­nu­tých rýb, iných orga­nic­kých zbyt­kov. Čas­to je ich čin­nosť žia­du­ca naj­mä v prí­tom­nos­ti odchov­ných nádr­ží, kde sa teore­tic­ky môže viac hro­ma­diť orga­nic­ký odpad. Nie­kto­ré z nich – napr. ampu­lá­rie, však doká­žu svo­ji­mi exkre­men­ta­mi pri veľ­kej veľ­kos­ti znač­ne zaťa­žiť vodu, pre­to sa na veľ­ké­ho jedin­ca Ampul­la­ria odpo­rú­ča 30 l vody.

Sli­má­ky sa živia aj ria­sa­mi, pri nedos­tat­ku potra­vy aj rast­li­na­mi, v kto­rých doká­žu vytvo­riť malé dier­ky. Uli­ta (las­tú­ra) sli­má­kov je zlo­že­ná aj z váp­ni­ka, pre­to vo vodách veľ­mi mäk­kých sa vod­ným sli­má­kom neda­rí – váp­nik vyža­du­jú. V prí­pa­de jeho nedos­tat­ku sú ich schrán­ky mäk­ké a sli­má­kom cel­ko­vo chát­ra­jú. To zna­me­ná, že ulit­ní­ky vo väč­šom množ­stve význam­ne vplý­va­jú na tvrdo­sť vody. Ak máme takú­to vodu, sli­má­kom sa pri­dá­va do vody napr. sépi­ová kosť, prí­pad­ne iná for­ma dostup­ná for­ma váp­ni­ka. Z hľa­dis­ka tvor­by pohlav­ných buniek to sú pre­važ­ne her­maf­ro­di­ti (oboj­po­hlav­ný), ale aj gono­cho­ris­ti. Sli­má­ky sú pre nie­kto­ré dru­hy rýb potra­vou, samoz­rej­me naj­mä men­šie dru­hy. Vedia si na nich pochut­nať rájov­ce, iné laby­rint­ky, cich­li­dy, štvorzubce.


In tanks, snails are com­mon­ly kept, belo­n­ging to the class Gas­tro­po­da, and to a les­ser extent, bival­ves of the class Lamel­lib­ran­chia (Bival­via). Other clas­ses such as Monop­la­cop­ho­ra, Scap­ho­po­da, and Cep­ha­lo­po­da (cep­ha­lo­pods) are not typi­cal­ly found in aqu­ariums, alt­hough they are clas­si­fied as mol­lusks. In this aqu­aris­tic sec­ti­on, we con­si­der only aqu­atic spe­cies, whi­le ter­res­trial ones are more rele­vant to terraristics.

The term snails” is often used, but it’s not enti­re­ly accu­ra­te. We should refer to them as gas­tro­pods, inc­lu­ding bival­ves. Snails play a role in the aqu­arium as con­su­mers of unu­sed mate­rial, such as deca­y­ing lea­ves, lef­to­ver food, dead fish, and other orga­nic remains. The­ir acti­vi­ty is par­ti­cu­lar­ly desi­rab­le in bre­e­ding tanks, whe­re orga­nic was­te can the­ore­ti­cal­ly accu­mu­la­te more. Some of them, like app­le snails (ampul­la­ria), can sig­ni­fi­can­tly affect water quali­ty due to the­ir exc­re­ment, so a lar­ge indi­vi­du­al is recom­men­ded to have at least 30 liters of water.

Snails also feed on algae and, in the absen­ce of food, can con­su­me plants, cre­a­ting small holes in them. The shells of water snails are com­po­sed of cal­cium, so they strugg­le in very soft waters – they requ­ire cal­cium. In case of its defi­cien­cy, the­ir shells beco­me soft, and the snails dete­ri­ora­te ove­rall. This means that snails, in lar­ger quan­ti­ties, sig­ni­fi­can­tly influ­en­ce water hard­ness. If the water is soft, you can add a sour­ce of cal­cium, such as cutt­le­bo­ne, to the water for the snails. Regar­ding the for­ma­ti­on of repro­duc­ti­ve cells, they are most­ly her­maph­ro­di­tes, but some are gono­cho­ris­tic. Snails are prey for some fish spe­cies, espe­cial­ly smal­ler ones. Gou­ra­mis, other laby­rinth fish, cich­lids, and loaches enjoy fee­ding on them.


In Aqu­arien wer­den in der Regel Schnec­ken gehal­ten, die zur Klas­se Gas­tro­po­da gehören und in gerin­ge­rem Maße auch Mus­cheln der Klas­se Lamel­lib­ran­chia (Bival­via). Ande­re Klas­sen wie Monop­la­cop­ho­ra, Scap­ho­po­da und Cep­ha­lo­po­da (Kopf­füßer) sind nor­ma­ler­we­i­se nicht in Aqu­arien zu fin­den, obwohl sie zu den Weich­tie­ren gehören. In die­sem aqu­aris­tis­chen Abschnitt bet­rach­ten wir nur Was­ser­schnec­ken, wäh­rend ter­res­tris­che Schnec­ken eher Gegens­tand der Ter­ra­ris­tik sind.

Der Beg­riff Schnec­ken” wird oft ver­wen­det, ist jedoch nicht ganz kor­rekt. Wir soll­ten von Weich­tie­ren spre­chen, ein­sch­lie­ßlich Mus­cheln. Schnec­ken erfül­len im Aqu­arium die Funk­ti­on von Kon­su­men­ten für unge­nutz­tes Mate­rial wie ver­rot­ten­des Laub, übrig geb­lie­be­nem Fut­ter, toten Fis­chen und ande­ren orga­nis­chen Über­res­ten. Ihre Akti­vi­tät ist beson­ders wün­schen­swert in Zucht­bec­ken, wo sich the­ore­tisch mehr orga­nis­cher Abfall ansam­meln kann. Eini­ge von ihnen, wie Apfel­schnec­ken (Ampul­la­rien), kön­nen aufg­rund ihrer Exkre­men­te die Was­se­rqu­ali­tät erheb­lich bee­in­träch­ti­gen. Daher wird für ein gro­ßes Indi­vi­du­um Ampul­la­ria min­des­tens 30 Liter Was­ser empfohlen.

Schnec­ken ernäh­ren sich auch von Algen und kön­nen bei Nahrungs­man­gel auch Pflan­zen fres­sen und kle­i­ne Löcher darin erze­ugen. Die Scha­len von Was­ser­schnec­ken bes­te­hen aus Kalk, sodass sie in sehr wei­chem Was­ser Prob­le­me haben – sie benöti­gen Kalk. Bei Man­gel daran wer­den ihre Scha­len weich, und die Schnec­ken versch­lech­tern sich ins­ge­samt. Das bede­utet, dass Schnec­ken in größe­ren Men­gen die Was­ser­här­te erheb­lich bee­in­flus­sen. Bei wei­chem Was­ser kann den Schnec­ken eine Cal­ciu­mqu­el­le wie Sepias­cha­le zuge­fü­hrt wer­den. Hin­sicht­lich der Bil­dung von Fortpf­lan­zungs­zel­len sind sie meis­tens Zwit­ter, aber eini­ge sind gono­cho­ris­tisch. Schnec­ken sind Beute für eini­ge Fis­char­ten, beson­ders für kle­i­ne­re. Gura­mis, ande­re Laby­rinth­fis­che, Bunt­bars­che und Sch­mer­len genie­ßen es, sich an ihnen zu laben.


Dru­hy (foto) (15)

  • Ante­mo­ne helena
  • Clit­hon sp.
  • Dre­is­se­nia polymorpha
  • Gyrau­lus sp.
  • Mari­sa cornuarietis
  • Mela­no­ides granifera
  • Mela­no­ides tuberculata
  • Neri­ti­na natalensis
  • Pisi­dium sp.
  • Pla­nor­bel­la sp.
  • Poma­cea brid­ge­sii (Ampul­la­rius aus­tra­lis) – doras­tá do 67 cm
  • Poma­cea cf. lineata
  • Radix pereg­ra
  • Spha­e­rium corneum
  • Tylo­me­la­nia sp.

Iné dru­hy: Acro­lo­xus lacus­tris, Ancy­lus flu­via­ti­lis, Fer­ris­sia, Lym­nea stag­na­lis, Phy­sa fon­ti­na­lis, Phy­sas­tra pro­te­us, Pla­nor­bis cor­ne­us, Pla­nor­bis sp., Spha­e­rium rivi­co­la, Vivi­pa­rus viviparus



Use Facebook to Comment on this Post

Vodné ulitníky a lastúrniky

Akvaristika, Organizmy, Príroda, Technika, Živočíchy

Teplota vody

Hits: 2781

Udr­žia­va­nie tep­lo­ty v miest­nos­ti pre tro­pic­kú akva­ris­ti­ku nie­ke­dy nesta­čí. Nej­de ani tak o nedos­ta­toč­nú tep­lo­tu ako o sta­bil­nú tep­lo­tu. Odpo­rú­čam cho­vať také dru­hy rýb, kto­rých tep­lot­né náro­ky na vodu sú rov­na­ké, ale­bo aspoň pri­bliž­né. Veľ­ké kolí­sa­nie tep­lo­ty nie je vhod­né. Via­ce­ro cho­va­te­ľov, mňa nevy­ní­ma­júc občas pou­ži­je čias­toč­ne zní­že­nie tep­lo­ty pri výme­ne vody – otu­žo­va­nie. Nie­kto­ré ryby, napr. pan­cier­níč­ky, kap­ro­zúb­ky, ale iste aj mno­hé iné táto sku­toč­nosť sti­mu­lu­je k roz­mno­žo­va­niu. Je to čias­toč­ná simu­lá­cia obdo­bia daž­ďov. Nie je nie­ke­dy na ško­du, ak tep­lo­ta vody kolí­še v roz­me­dzí 12°C pri strie­da­ní dňa s nocou. V drvi­vej väč­ši­ne prí­pa­dov má sna­hu akva­ris­ta v našom mier­nom pás­me, tep­lo­tu vody zvý­šiť, ale­bo aspoň dodr­žať urči­tú tep­lo­tu, aby nekles­la pod ním sta­no­ve­nú hra­ni­cu. Na ten­to účel slú­žia ohrie­va­če. V prí­pa­de, ak potre­bu­je­me akvá­ri­um ochla­dzo­vať. V takom prí­pa­de sú finanč­né nákla­dy pro­fe­si­onál­ne­ho rie­še­nia už ove­ľa vyš­šie. Mož­no využiť napr. Pel­tie­ro­vé člán­ky. Pou­ži­tie ven­ti­lá­to­ra pred akvá­ri­um, doká­že čias­tko­vo zní­žiť tep­lo­tu len men­šie­ho akvária.

Ohrie­va­če súčas­nos­ti sa vyrá­ba­jú s ter­mos­ta­tom – čiže sú schop­né sa auto­ma­tic­ky vypí­nať po dosia­hnu­tí urči­té­ho stup­ňa. Neod­po­rú­čam už dnes pou­ží­vať ohrie­va­če, kto­ré neob­sa­hu­jú ter­mos­tat – ľah­ko sa vám môže stať, že zabud­ne­te naň a pri men­šej nádr­ži si môže­te svo­je ryby doslo­va uva­riť. Na 1 liter akvá­ria potre­bu­jem oby­čaj­ne 0.51 W prí­ko­nu ohrie­va­ča. Menej ako 0.5 W už nemu­sí sta­čiť – naj­mä pri nádr­žiach vyš­ších ako 50 cm, a viac ako 1 W môže pri dlh­šej neprí­tom­nos­ti a poru­chy prí­stro­ja spô­so­biť rela­tív­ne rých­lo kata­stro­fu. V prí­pa­de, že vodu vymie­ňa­me, odka­ľu­je­me, je vhod­nej­šie ohrie­vač odpo­jiť od elek­tric­kej sie­te. Totiž, v takom prí­pa­de sa môže stať, že časť ohrie­va­ča (naj­mä so sil­nej­ším prí­ko­nom) je sil­ne roz­pá­le­ná a po dopl­ne­ní oby­čaj­ne stu­den­šej vody môže prasknúť.

O vzťa­hu tep­lo­ty vody a rýb sa dá pove­dať, že síce pri niž­šej tep­lo­te sa vysky­tu­je via­ce­ro cho­rôb, z dôvo­du toho, že para­zi­tom sa oby­čaj­ne ďale­ko lep­šie pro­fi­tu­je pri niž­šej tep­lo­te. Na dru­hej stra­ne stu­den­šia voda má aj priaz­ni­vý efekt – zvy­šu­je sa maxi­mál­ny vek a kon­dí­cia rýb. Nepreh­rie­vaj­te viac ako je nut­né, ale ani ryby pri­veľ­mi nepodc­hla­dzuj­te. Ku tej­to prob­le­ma­ti­ke viac v člán­ku Róber­ta Toma­naZvý­še­nie tep­lo­ty vody sa čas­to pou­ží­va pri lie­če­ní cho­rôb. Ryby, kto­ré cho­vá väč­ši­na akva­ris­tov na sve­te pochá­dza­jú z tro­pic­kých a subt­ro­pic­kých oblas­tí, kde je vhod­ná naša izbo­vá tep­lo­ta. To jest tep­lo­ta, kto­rá vyho­vu­je aj člo­ve­ku. Exis­tu­jú samoz­rej­me roz­die­ly, ter­čov­ce obľu­bu­jú vyš­šiu tep­lo­tu, dánia, tet­ry neóno­vé skôr stu­den­šiu vodu (20°C). Tep­lo­ta vody má vzťah ku kon­cen­trá­cii kys­lí­ka vo vode. Čím je tep­lo­ta vody vyš­šia, tým menej kys­lí­ka je vo vode. Tep­lo­ta vody má vplyv, ako som už spo­me­nul, aj na roz­mno­žo­va­cie inštink­ty. Rýb aj vod­ných rast­lín

Aj rast­li­ny sú cit­li­vé na tep­lo­tu. Pre­ja­vy nie sú síce okom tak vidi­teľ­né ako u živo­čí­chov, ale sú o to nevrat­nej­šie. Naopak pove­dal by som, že tep­lot­ným extré­mom viac odo­la­jú mobil­né ryby, ako aktív­nym pohy­bom sa nepre­ja­vu­jú­ce rast­li­ny. Jed­not­li­vé rast­li­ny majú svo­je opti­mum pri rôz­nej tep­lo­te. To je dôvo­dom iné­ho vzhľa­du rast­lín v rôz­nych nádr­žiach. Samoz­rej­me je ten len jeden fak­tor, je však limi­tu­jú­cim vo svo­jej pod­sta­te. Napr. jed­not­li­vé lis­ty môžu byť tmav­šie, bled­šie, môžu rásť ďalej od seba, bliž­šie k sebe, cel­ko­vo rast­li­na môže vyka­zo­vať vyš­šiu pro­duk­ciu, atď. Prí­pad­ne môže nastať situ­ácia, kedy rast­li­ny pri vyso­kých, a veľ­mi níz­kych tep­lo­tách hynú. Vše­obec­ne sa dá pove­dať, že pre bež­né rast­li­ny vysky­tu­jú­ce sa v akvá­riách je vhod­ná naj­vyš­šia dlho­do­bá tep­lo­ta 27°C. Vo svo­je pra­xi som sa čas­to stre­tá­val z názo­rom, že vo vyš­šej tep­lo­te rast­li­ny nepre­ži­jú. Táto situ­ácia nastá­va zrej­me vo väč­ši­ne vašich domác­nos­tí naj­mä v júli, kedy sa let­né horú­ča­vy špl­ha­jú ku šty­rid­siat­ke. Pou­ká­žem na to, že v prí­ro­de takis­to na vrcho­le vege­tač­né­ho obdo­bia páli do vody sln­ko veľ­kou inten­zi­tou. A prá­ve vte­dy rast­li­ny doslo­va ras­tú ako z vody, čas­to kvit­nú. A rov­na­ko to bude aj našich akváriách.


Main­tai­ning the tem­pe­ra­tu­re in a room for tro­pi­cal aqu­ariums is some­ti­mes not enough. It’s not just about insuf­fi­cient tem­pe­ra­tu­re but about a stab­le tem­pe­ra­tu­re. I recom­mend kee­ping fish spe­cies who­se tem­pe­ra­tu­re requ­ire­ments for water are the same or at least simi­lar. Lar­ge tem­pe­ra­tu­re fluc­tu­ati­ons are not suitab­le. Some hob­by­ists, inc­lu­ding myself, occa­si­onal­ly use a par­tial dec­re­a­se in tem­pe­ra­tu­re during water chan­ges – acc­li­ma­ti­za­ti­on. This fact sti­mu­la­tes repro­duc­ti­on in cer­tain fish spe­cies, such as armo­red cat­fish and kil­li­fish. It is a par­tial simu­la­ti­on of the rai­ny sea­son. It is some­ti­mes bene­fi­cial if the water tem­pe­ra­tu­re fluc­tu­ates wit­hin a ran­ge of 12°C bet­we­en day and night. In most cases, aqu­arists in our tem­pe­ra­te zone tend to inc­re­a­se or at least main­tain a cer­tain water tem­pe­ra­tu­re to pre­vent it from drop­ping below a set limit. For this pur­po­se, hea­ters are used. If cooling the aqu­arium is neces­sa­ry, pro­fes­si­onal solu­ti­ons can be more expen­si­ve. Pel­tier modu­les can be used, for exam­ple. Using a fan in front of the aqu­arium can par­tial­ly lower the tem­pe­ra­tu­re, espe­cial­ly in smal­ler tanks.

Modern hea­ters come with a ther­mos­tat, mea­ning they can auto­ma­ti­cal­ly turn off when a cer­tain tem­pe­ra­tu­re is rea­ched. I do not recom­mend using hea­ters wit­hout a ther­mos­tat nowa­da­ys – you might for­get about them, and in smal­ler tanks, you could lite­ral­ly cook your fish. For eve­ry liter of the aqu­arium, I usu­al­ly need 0.51 W hea­ter power. Less than 0.5 W may not be suf­fi­cient, espe­cial­ly for tanks hig­her than 50 cm, and more than 1 W can cau­se a catas­trop­he rela­ti­ve­ly quick­ly in case of a pro­lon­ged absen­ce and a devi­ce mal­func­ti­on. When chan­ging or top­ping up the water, it’s advi­sab­le to dis­con­nect the hea­ter from the power supp­ly. In such a case, part of the hea­ter (espe­cial­ly tho­se with hig­her power) can be extre­me­ly hot, and adding usu­al­ly col­der water after its dep­le­ti­on can cau­se it to crack.

Regar­ding the rela­ti­ons­hip bet­we­en water tem­pe­ra­tu­re and fish, it can be said that alt­hough lower tem­pe­ra­tu­res can lead to vari­ous dise­a­ses, para­si­tes usu­al­ly thri­ve bet­ter at lower tem­pe­ra­tu­res. On the other hand, col­der water has favo­rab­le effects – it inc­re­a­ses the maxi­mum age and con­di­ti­on of fish. Do not over­he­at more than neces­sa­ry, but do not let the fish get too cold eit­her. For more on this issue, refer to Róbert Toma­n’s artic­le. Inc­re­a­sing the water tem­pe­ra­tu­re is often used in dise­a­se tre­at­ment. Most fish com­mon­ly kept by hob­by­ists worl­dwi­de come from tro­pi­cal and subt­ro­pi­cal regi­ons, whe­re our room tem­pe­ra­tu­re is suitab­le. That is a tem­pe­ra­tu­re that suits humans as well. Of cour­se, the­re are dif­fe­ren­ces – dis­cus fish pre­fer hig­her tem­pe­ra­tu­res, dani­os, neon tetras pre­fer cooler water (20°C). Water tem­pe­ra­tu­re has a rela­ti­ons­hip with the con­cen­tra­ti­on of oxy­gen in the water. The hig­her the water tem­pe­ra­tu­re, the less oxy­gen is in the water. Water tem­pe­ra­tu­re also affects repro­duc­ti­ve ins­tincts, both for fish and aqu­atic plants.

Plants are also sen­si­ti­ve to tem­pe­ra­tu­re. Alt­hough the mani­fe­sta­ti­ons are not as visib­le to the eye as in ani­mals, they are irre­ver­sib­le. Con­ver­se­ly, I would say that indi­vi­du­al plants are more resis­tant to tem­pe­ra­tu­re extre­mes than mobi­le fish, who­se appe­a­ran­ce is not affec­ted by acti­ve move­ment. Indi­vi­du­al plants have the­ir opti­mum tem­pe­ra­tu­re. This is the rea­son for the dif­fe­rent appe­a­ran­ce of plants in vari­ous tanks. Of cour­se, it is just one fac­tor, but it is essen­tial­ly limi­ting. For exam­ple, indi­vi­du­al lea­ves can be dar­ker, paler, grow furt­her apart or clo­ser toget­her, and the ove­rall plant may exhi­bit hig­her pro­duc­ti­on, etc. Or, in some cases, plants may die at very high or very low tem­pe­ra­tu­res. Gene­ral­ly, the hig­hest long-​term tem­pe­ra­tu­re suitab­le for com­mon aqu­arium plants is 27°C. In my prac­ti­ce, I often encoun­te­red the opi­ni­on that plants would not sur­vi­ve in hig­her tem­pe­ra­tu­res. This situ­ati­on pro­bab­ly occurs in most hou­se­holds, espe­cial­ly in July when sum­mer heat app­ro­aches for­ty degre­es. I would like to point out that in natu­re, during the peak of the vege­ta­ti­on peri­od, the sun’s inten­si­ty is high over the water. And at that time, plants lite­ral­ly grow like cra­zy, often blo­oming. The same will hap­pen in our aquariums.


Die Auf­rech­ter­hal­tung der Tem­pe­ra­tur in einem Raum für tro­pis­che Aqu­arien reicht manch­mal nicht aus. Es geht nicht nur um unzu­re­i­chen­de Tem­pe­ra­tur, son­dern um eine sta­bi­le Tem­pe­ra­tur. Ich emp­feh­le, Fis­char­ten zu hal­ten, deren Tem­pe­ra­tu­ran­for­de­run­gen für das Was­ser gle­ich oder zumin­dest ähn­lich sind. Gro­ße Tem­pe­ra­tursch­wan­kun­gen sind nicht gee­ig­net. Eini­ge Hob­by­is­ten, ein­sch­lie­ßlich mir, ver­wen­den gele­gen­tlich eine tei­lwe­i­se Tem­pe­ra­tur­sen­kung wäh­rend des Was­ser­wech­sels – Akk­li­ma­ti­sie­rung. Die­ser Fakt sti­mu­liert die Repro­duk­ti­on bei bes­timm­ten Fis­char­ten wie Pan­zer­wel­sen und Kil­li­fis­chen. Es han­delt sich um eine tei­lwe­i­se Simu­la­ti­on der Regen­ze­it. Es ist manch­mal vor­te­il­haft, wenn die Was­ser­tem­pe­ra­tur im Bere­ich von 12°C zwis­chen Tag und Nacht sch­wankt. In den meis­ten Fäl­len neigen Aqu­aria­ner in unse­rer gemä­ßig­ten Zone dazu, die Was­ser­tem­pe­ra­tur zu erhöhen oder zumin­dest auf einem bes­timm­ten Nive­au zu hal­ten, um zu ver­hin­dern, dass sie unter eine fest­ge­leg­te Gren­ze fällt. Hier­für wer­den Heiz­ge­rä­te ver­wen­det. Wenn eine Küh­lung des Aqu­ariums erfor­der­lich ist, kön­nen pro­fes­si­onel­le Lösun­gen teurer sein. Peltier-​Module kön­nen beis­piel­swe­i­se ver­wen­det wer­den. Die Ver­wen­dung eines Lüf­ters vor dem Aqu­arium kann die Tem­pe­ra­tur tei­lwe­i­se sen­ken, ins­be­son­de­re in kle­i­ne­ren Tanks.

Moder­ne Heiz­ge­rä­te sind mit einem Ther­mos­tat aus­ges­tat­tet, was bede­utet, dass sie sich auto­ma­tisch auss­chal­ten kön­nen, wenn eine bes­timm­te Tem­pe­ra­tur erre­icht ist. Ich emp­feh­le heut­zu­ta­ge nicht mehr, Heiz­ge­rä­te ohne Ther­mos­tat zu ver­wen­den – Sie könn­ten sie ver­ges­sen, und in kle­i­ne­ren Tanks könn­ten Sie Ihre Fis­che buchs­täb­lich kochen. Für jeden Liter des Aqu­ariums benöti­ge ich nor­ma­ler­we­i­se 0,51 W Heiz­le­is­tung. Weni­ger als 0,5 W könn­te nicht aus­re­i­chen, ins­be­son­de­re für Tanks über 50 cm Höhe, und mehr als 1 W kann bei län­ge­rer Abwe­sen­he­it und Gerä­te­fehl­funk­ti­on rela­tiv schnell eine Kata­strop­he verur­sa­chen. Beim Wech­seln oder Auf­fül­len des Was­sers ist es rat­sam, den Heiz­kör­per vom Strom­netz zu tren­nen. In einem sol­chen Fall kann ein Teil des Heiz­kör­pers (ins­be­son­de­re bei höhe­rer Leis­tung) extrem heiß sein, und nach dem Auf­fül­len mit nor­ma­ler­we­i­se käl­te­rem Was­ser kann er brechen.

In Bez­ug auf die Bez­ie­hung zwis­chen Was­ser­tem­pe­ra­tur und Fis­chen kann gesagt wer­den, dass nied­ri­ge­re Tem­pe­ra­tu­ren zu vers­chie­de­nen Kran­khe­i­ten füh­ren kön­nen, da Para­si­ten in der Regel bei nied­ri­ge­ren Tem­pe­ra­tu­ren bes­ser gede­i­hen. Ande­rer­se­its hat käl­te­res Was­ser posi­ti­ve Effek­te – es erhöht das maxi­ma­le Alter und die Kon­di­ti­on der Fis­che. Über­hit­zen Sie also nicht mehr als not­wen­dig, aber las­sen Sie die Fis­che auch nicht zu kalt wer­den. Wei­te­re Infor­ma­ti­onen dazu fin­den Sie im Arti­kel von Róbert Toman. Eine Erhöhung der Was­ser­tem­pe­ra­tur wird oft zur Behand­lung von Kran­khe­i­ten ein­ge­setzt. Die meis­ten von Hob­by­is­ten welt­we­it gehal­te­nen Fis­che stam­men aus tro­pis­chen und subt­ro­pis­chen Regi­onen, in denen unse­re Zim­mer­tem­pe­ra­tur gee­ig­net ist. Das ist eine Tem­pe­ra­tur, die auch Men­schen passt. Natür­lich gibt es Unters­chie­de – Dis­kus­fis­che bevor­zu­gen höhe­re Tem­pe­ra­tu­ren, Dani­os, Neon-​Tetras bevor­zu­gen käl­te­res Was­ser (20°C). Die Was­ser­tem­pe­ra­tur hat eine Bez­ie­hung zur Sau­ers­toff­kon­zen­tra­ti­on im Was­ser. Je höher die Was­ser­tem­pe­ra­tur, des­to weni­ger Sau­ers­toff befin­det sich im Was­ser. Die Was­ser­tem­pe­ra­tur bee­in­flusst auch die Fortpf­lan­zung­sins­ti­tu­te, sowohl bei Fis­chen als auch bei Wasserpflanzen.

Auch Pflan­zen rea­gie­ren emp­find­lich auf Tem­pe­ra­tur. Obwohl die Ers­che­i­nun­gen nicht so sicht­bar sind wie bei Tie­ren, sind sie umso irre­ver­sib­ler. Umge­ke­hrt wür­de ich sagen, dass ein­zel­ne Pflan­zen resis­ten­ter gegen Tem­pe­ra­tu­rex­tre­me sind als mobi­le Fis­che, deren Aus­se­hen nicht von akti­ver Bewe­gung bee­in­flusst wird. Ein­zel­ne Pflan­zen haben ihre opti­ma­le Tem­pe­ra­tur. Das ist der Grund für das unters­chied­li­che Aus­se­hen von Pflan­zen in vers­chie­de­nen Tanks. Natür­lich ist es nur ein Fak­tor, aber er ist im Wesen­tli­chen beg­ren­zend. Ein­zel­ne Blät­ter kön­nen dunk­ler, blas­ser sein, wei­ter ause­i­nan­der oder näher zusam­men wach­sen, und die Gesamtpf­lan­ze kann eine höhe­re Pro­duk­ti­on aufwe­i­sen, usw. Oder in eini­gen Fäl­len kön­nen Pflan­zen bei sehr hohen oder sehr nied­ri­gen Tem­pe­ra­tu­ren ster­ben. Im All­ge­me­i­nen ist die höchs­te Lang­ze­it­tem­pe­ra­tur für gän­gi­ge Aqu­arienpf­lan­zen 27°C. In mei­ner Pra­xis bin ich oft auf die Mei­nung ges­to­ßen, dass Pflan­zen höhe­re Tem­pe­ra­tu­ren nicht über­le­ben wür­den. Die­se Situ­ati­on tritt wahrs­che­in­lich in den meis­ten Haus­hal­ten auf, ins­be­son­de­re im Juli, wenn die Som­mer­hit­ze auf vier­zig Grad zus­te­uert. Ich möch­te darauf hin­we­i­sen, dass die Son­ne in der Natur wäh­rend des Höhe­punkts der Vege­ta­ti­ons­pe­ri­ode inten­siv über dem Was­ser sche­int. Und zu die­ser Zeit wach­sen Pflan­zen buchs­täb­lich wie ver­rüc­kt, blühen oft. Das Gle­i­che wird auch in unse­ren Aqu­arien passieren.

Use Facebook to Comment on this Post