Slovenské synonymum je závojnatka. Druh pochádzajúci z juhovýchodnej Ázie. Existuje množstvo foriem, závojnatých, zlatých, červených, atď. Rozmnožovanie karasov je pomerne divoká záležitosť. Množstvo ikier je veľmi veľké, môže dosahovať aj 5000 kusov. Karasy sa šľachtili už v stredovekej Čine, možno aj v staroveku. Karas je ryba, ktorá je väčšieho vzrastu, závojnatky sú menšie formy, ale i závojnatku môžeme zaradiť medzi veľké ryby. Závojnatky značne bagrujú dno, rastliny často vytrhávajú. Preto by som odporúčal chovať ich buď v nádrži bez rastlín, alebo s pevne upevnenými rastlinami o veľké kamene alebo inú dekoráciu. Prípadne by som sa orientoval na skôr na pevnejšie druhy ako napr. Echinodorus, Anubias, Cryptocoryne. Neodporúčam najmä karasy chovať spolu s inými druhmi rýb. Ich látková premena prebiehajúca v tráviacej sústave vôbec nie je dokonalá a tieto vyvrhnuté produkty sú pomerne jedovaté pre iné druhy rýb. To je aj dôvod na to, aby sme počítali na jedného jedinca viac litrov vody, aby sme zabezpečili dobrú filtráciu nádrže. Prešľachtené zlaté karasy – Carassius auratus auratus. Závojnatky – Carassius auratus auratus var. bicaudatus. Existujú formy, ktoré majú teleskopické oči, balónové oči, kedy sú očné viečka akoby nafúknuté do veľkosti hlavy jedinca. Šľachtenie foriem nepozná hádam hranice. Nie som zástancom foriem, ktoré sú na úkor živočícha ako takého. Registrujem tieto formy: tele, kometa, shubunkin, ryukin, červená karkulka, demekin – teleskopka, čótengan – nebohľadka, suihogon – bublinočka, ranchu – levia hlava, oranda, fancy, veiltail, redcap oranda, pearlscale, fantail, celestial, bublina, black moor, calico. čierna teleskopka, balónové oko, bublinočka, nebohľadka, teleskopka.
The Slovak synonym is “zavojnatka”. Species originating from Southeast Asia. There are many forms, veil-tails, goldfish, red ones, etc. Breeding carps is a relatively wild affair. The amount of eggs is very large, reaching up to 5000 pieces. Carps have been bred in medieval China, perhaps even in ancient times. The carp is a larger fish, while the veil-tails are smaller forms, but they can also be classified as large fish. Veil-tails significantly stir up the bottom, often uprooting plants. Therefore, I would recommend keeping them either in a tank without plants or with firmly anchored plants or large rocks as decoration. Alternatively, I would focus more on hardy species such as Echinodorus, Anubias, Cryptocoryne. I do not recommend keeping carps especially with other fish species. Their metabolic process in the digestive system is not perfect, and these excreted products are quite toxic to other fish species. That is also the reason why we should count on one individual per more liters of water to ensure good tank filtration. Bred goldfish – Carassius auratus auratus. Veil-tails – Carassius auratus auratus var. bicaudatus. There are forms that have telescopic eyes, balloon eyes, where the eyelids are inflated to the size of the individual’s head. The breeding of forms knows no limits. I am not a proponent of forms that come at the expense of the animal itself. I register these forms: tele, comet, shubunkin, ryukin, red cap, demekin – telescope, choutengan – bubble-eye, suihogon – bubble-eye, ranchu – lion’s head, oranda, fancy, veiltail, redcap oranda, pearlscale, fantail, celestial, bubble-eye, black moor, calico, black telescope, bubble-eye, telescope.
Das slowakische Synonym ist “Zavojnatka”. Die Art stammt aus Südostasien. Es gibt viele Formen, Schleierschwänze, Goldfische, rote, usw. Die Zucht von Karpfen ist eine relativ wilde Angelegenheit. Die Menge an Eiern ist sehr groß und kann bis zu 5000 Stück betragen. Karpfen wurden im mittelalterlichen China gezüchtet, vielleicht sogar schon in der Antike. Der Karpfen ist ein größerer Fisch, während die Schleierschwänze kleinere Formen sind, aber auch als große Fische eingestuft werden können. Schleierschwänze wirbeln den Boden deutlich auf und reißen oft Pflanzen heraus. Daher würde ich empfehlen, sie entweder in einem Tank ohne Pflanzen oder mit fest verankerten Pflanzen oder großen Steinen als Dekoration zu halten. Alternativ würde ich mich eher auf robuste Arten wie Echinodorus, Anubias, Cryptocoryne konzentrieren. Ich empfehle nicht, Karpfen besonders mit anderen Fischarten zu halten. Ihr Stoffwechselprozess im Verdauungssystem ist nicht perfekt, und diese ausgeschiedenen Produkte sind ziemlich giftig für andere Fischarten. Das ist auch der Grund, warum wir mit einer Person pro mehr Liter Wasser rechnen sollten, um eine gute Tankfiltration zu gewährleisten. Gezüchtete Goldfische – Carassius auratus auratus. Schleierschwänze – Carassius auratus auratus var. bicaudatus. Es gibt Formen, die teleskopische Augen, Ballonaugen haben, bei denen die Augenlider auf die Größe des Kopfes des Individuums aufgeblasen sind. Die Zucht von Formen kennt keine Grenzen. Ich bin kein Befürworter von Formen, die auf Kosten des Tieres selbst gehen. Ich melde diese Formen an: Tele, Komet, Shubunkin, Ryukin, Rote Kappe, Demekin – Teleskop, Choutengan – Bubble-Eye, Suihogon – Bubble-Eye, Ranchu – Löwenkopf, Oranda, Fancy, Veiltail, Redcap Oranda, Perlenmaßstab, Fächerschwanz, Himmlisch, Bubble-Eye, Schwarzer Moor, Calico, Schwarzes Teleskop, Bubble-Eye, Teleskop.
Na konci októbra 2006 sa konal v Prahe2. ročník Aqua Festivalu. Program sľuboval nasledovné – Český šampionát chovatelů skalár, Mezinárodní výstava tématických akvárií, prednášková odpoledne, představení činnosti českých a slovenských spolků, prodej akvaristických potřeb a literatury… Tentokrát bol jeho súčasťou šampionát skalárov. Podľa toho, čo som sa dopočul, tak predovšetkým českí akvaristi vytvorili pravdepodobne štandard, ktorý je akceptovaný medzinárodnou spoločnosťou. Ja som sa vybral do Prahy spolu so Silvesterom Valentinom 21.10.2006. Pekne sme sa odviezli autobusom Student Agency, ktorým sme mimochodom aj odcestovali, ráno sme boli už v Kongresovom centre neďaleko Vyšehradu. Chceli sme sa najprv naraňajkovať, ale akosi nás to stále ťahalo robiť niečo iné. To iné sa odohrávalo práve na výstave. Organizátori zrejme nesplnili celkom očakávania, malo byť vystavených ďaleko viac tematických akvárií, ja sa priznám, šiel som tam najmä na skaláre.
Atmosféra, ktorá vládla na festivale mne vyhovovala. Možno preto, že veľa ľudí poznám, každopádne cítil som sa výborne. Prítomní boli samozrejme predajcovia a poniektorí veru boli pre mňa aj zriedkaví. Prehodili sme vždy pár slov. ak sme sa na to cítili. V priebehu času dorazila z Bratislavy ďalšia skupina, došoférovaná Milom Peškom. Zhliadol som aj relatívne početnú skupinu okolo Pala Sedláka. Organizátori, konkrétne Vladko Bydžovský spomínal, že ho mrzí, že domáci pražáci, ktorých malo byť všade počuť, veľmi neprišli, ale zato slovákov tam bolo dosť. Iste nielen ja som si všimol, že aj nemecky hovoriacich tam bolo dosť. Je to škoda. V programe dňa, kedy sme tam my boli, t.j. v sobotu, bolo vyhlásenie výsledkov a prednášky. My sme absolvovali prednášku pána Jürgena Schmidta na tému Labyrintky juhovýchodnej Ázie. Rozprával o mnohých druhoch rodu Betta. Vzhľadom na dosť nízku účasť na celom podujatí v tom čase ma celkom milo prekvapilo, koľko ľudí bolo zvedavých na prednášku. Ďalšiu prednášku viedol Vladko Bydžovský. Prezentoval na nej svoje návštevy po rôznych chovateľoch. Orientovaná bola samozrejme najmä ma druhy rodu Pterophyllum. Videli sme zábery z kuchyne úspešných chovateľov a počuli sme mnoho užitočných chovateľských slov. Po vyhlásení výsledkov nasledovala prednáška Horsta Linkeho, pre ktorého sú zjavne skaláre dominantné. Pán Linke bol perfektne vybavený technikou na prezentáciu, čo ostatne mi malo byť jasné už po Bydžovského prednáške, kde sme videli aj akvaristické vybavenie Hosta Linkeho. Vskutku precízna práca. Pan Linke je určite zručný nielen v akvaristike. Ocenil som, že prednáška bola komplexná a pritom nie zdĺhavá (podotýkam, že bola prekladaná do češtiny). Videl som v nej použité dokonca novinové výstrižky o skalároch z obdobia snáď 19. storočia. Nepamätám si presne fakty, ale zaujalo ma to veľmi. Páčilo sa mi aj to, že pán Linke chová svojich skalárov v akváriách, kde je dno, rastliny. Bohužiaľ čas bežal a my sme museli ísť na autobus, takže sme odbehli z prednášky. Hádam niekedy nabudúce. Skaláre boli v 53 nádržiach. Zaregistroval som iba štyri tematické akvária :-((((.
At the end of October 2006, the 2nd Aqua Festival took place in Prague. The program promised the following – Czech Championship of Angelfish Breeders, International Exhibition of Thematic Aquariums, lecture afternoons, presentation of activities of Czech and Slovak associations, sale of aquarium supplies and literature… This time, it included an angelfish championship. According to what I heard, Czech aquarists, in particular, probably set a standard that is accepted by the international community. I went to Prague with Silvester Valentin on October 21, 2006. We had a pleasant journey by the Student Agency bus, which we also used for our return. In the morning, we were already at the Congress Center near Vyšehrad. We wanted to have breakfast first, but somehow we were always drawn to do something else. That something else was happening at the exhibition. The organizers apparently didn’t quite meet expectations; there were supposed to be many more thematic aquariums, but I confess I mainly went there for angelfish.
I liked the atmosphere at the festival. Perhaps because I know many people, anyway, I felt great. Of course, there were vendors, and some of them were indeed rare for me. We exchanged a few words whenever we felt like it. Over time, another group arrived from Bratislava, driven by Milo Peško. I also saw a relatively large group around Pal Sedlák. The organizers, specifically Vladko Bydžovský, mentioned that he regretted that the local Prague residents, who were supposed to be heard everywhere, did not come very much, but there were quite a few Slovaks instead. I certainly noticed, and I’m not alone, that there were also quite a few German speakers. It’s a pity. On the day we were there, Saturday, the program included announcing the results and lectures. We attended a lecture by Mr. Jürgen Schmidt on the subject of Labyrinth Fish of Southeast Asia. He talked about many species of the Betta genus. Given the relatively low attendance at the entire event at that time, I was quite pleasantly surprised by how many people were curious about the lecture. Vladko Bydžovský led another lecture, presenting his visits to various breeders, mainly focused on species of the Pterophyllum genus. We saw shots from the kitchens of successful breeders and heard many useful breeding words. After the announcement of the results, Horst Linke gave a lecture, for whom angelfish are evidently dominant. Mr. Linke was perfectly equipped with presentation technology, which should have been clear to me already after Bydžovský’s lecture, where we saw Linke’s aquarium equipment. Truly precise work. Mr. Linke is certainly skilled not only in aquaristics. I appreciated that the lecture was comprehensive and not overly lengthy (note that it was translated into Czech). I saw newspaper clippings about angelfish from perhaps the 19th century used in it. I don’t remember the facts exactly, but it fascinated me a lot. I also liked that Mr. Linke keeps his angelfish in tanks with substrate and plants. Unfortunately, time was running out, and we had to catch the bus, so we had to leave the lecture. Hopefully, sometime in the future. There were angelfish in 53 tanks. I only noticed four thematic aquariums :-((((.
Na konci októbra 2005 sa konal v Prahe 1. ročník Aqua Festivalu. Priestory boli obrovské – expozície boli stratené. Príliš honosné priestory, ale ktovie, možno raz bude plno aj na takejto ploche. Súčasťou bol Český šampionát chovatelů terčovců – 2. ročník. Terčovce boli rozdelené do kategórií, zastúpené boli formy od výmyslu sveta, zelené, modré, Haeckel, čerevené, spotted, plošný tyrkys, biele formy, diamant, kobalt, levia hlava, orange, škoda že pozadie na akváriách bolo otrasné. Boli to majstrovstvá ČR, ale boli boli tu zastúpené aj ryby zo Slovenska, Nemecka, atď..
Aqua Festival 2005
At the end of October 2005, the first Aqua Festival took place in Prague. The spaces were huge – the exhibits were almost lost. The premises were too grandiose, but who knows, maybe one day there will be plenty even on such a large area. It included the Czech Championship of Discus Breeders – the 2nd edition. Discus were divided into categories, represented were forms from all over the world, green, blue, Haeckel, red, spotted, solid turquoise, white forms, diamond, cobalt, lionhead, orange. It’s a shame that the background on the aquariums was terrible. These were the Czech Republic Championships, but fish from Slovakia, Germany, etc., were also represented.
Africké jazerá vyprodukovali ohromujúco rozličnú faunu cichlidovitých rýb. Jazero Tanganika, ktorého vek sa odhaduje na 9 – 12 miliónov rokov, je najstaršie východoafrické jazero a skrýva morfologicky, geneticky a behaviorálne najrozmanitejšiu skupinu cichlidovitých rýb. Mnoho z vyše 200 popísaných druhov sa delí do geograficky a geneticky odlišných populácií, ktoré sa líšia hlavne v ich sfarbení. Najlepším príkladom tohto javu je endemický rod Tropheus, v rámci ktorého sa popísalo 6 druhov a viac ako 70 odlišne sfarbených miestnych variantov. Okrem Tropheus duboisi, je celková morfológia v tomto rode veľmi podobná. Tropheusy sa hojne vyskytujú v hornej pobrežnej zóne vo všetkých typoch skalnatých biotopov, kde sa kŕmia riasami a skrývajú sa pred predátormi. Piesočnatým a bahnitým pobrežiam, ako aj ústiam riek sa striktne vyhýbajú. Je dokázané, že Tropheusy sa nedokážu pohybovať na väčšie vzdialenosti, najmä cez voľnú vodu, ako dôsledok ich vyhranenej špecifickosti životného prostredia a vernosti k určitému miestu a teritoriality.
Tropheus je jeden z najštudovanejších rodov jazera. Etologické štúdie Tropheus moori ukázali komplexné vzory správania sa a vysoko vyvinutú sociálnu organizáciu. Neexistuje u nich vyhranený pohlavný dimorfizmus. Obe pohlavia si chránia teritórium a na rozdiel od mnohých ďalších papuľovcov, Tropheusy tvoria dočasné páry počas rozmnožovania. Vývoj ikier a plôdika prebieha výlučne v ústach samíc. Predchádzajúce fylogeografické štúdie Tropheusov demonštrovali prekvapujúco veľké genetické rozdiely medzi populáciami. Tropheus duboisi bol opísaný ako najpôvodnejšia vetva a sedem odlišných skupín vzniklo väčšinou súčasne. Šesť z nich sa vyskytuje v individuálnych pobrežných oblastiach a jedna skupina sa sekundárne rozšírila a kolonizovala skalnaté miesta v podstate po celom jazere. Údaje získané analýzou mitochondriálnej DNA (mtDNA) ukázali, že napriek všeobecne podobnej morfológii sa môže sfarbenie rýb ohromne líšiť medzi geneticky blízko príbuznými populáciami a naopak, môže byť veľmi podobné medzi geneticky veľmi vzdialenými populáciami sesterských druhov. Tieto pozorovania sa čiastočne vysvetľujú ako dôsledok paralelnej evolúcie podobných farebných vzorov v rámci prirodzeného výberu alebo ako dôsledok priestorového kontaktu medzi dvoma geneticky odlišnými populáciami po druhotnom kontakte a následnom triedení rodu, kedy sa kríženci týchto populácií a ich potomkovia spätne krížili prednostne len s členmi jednej pôvodnej populácie.
African lakes have produced an astonishingly diverse fauna of cichlids. Lake Tanganyika, estimated to be 9 – 12 million years old, is the oldest East African lake and harbors the morphologically, genetically, and behaviorally most diverse group of cichlids. Many of the over 200 described species divide into geographically and genetically distinct populations that differ mainly in their coloration. The endemic genus Tropheus is a prime example of this phenomenon, with six species and over 70 differently colored local variants described within the genus. Apart from Tropheus duboisi, the overall morphology within this genus is very similar. Tropheus are abundant in the upper littoral zone in all types of rocky biotopes, where they feed on algae and seek shelter from predators. They strictly avoid sandy and muddy shores, as well as river mouths. It has been proven that Tropheus cannot move over long distances, especially through open water, due to their highly specific environmental requirements, site fidelity, and territoriality.
Tropheus is one of the most studied genera in the lake. Ethological studies of Tropheus moori revealed complex behavior patterns and highly developed social organization. There is no distinct sexual dimorphism. Both sexes defend territories, and unlike many other mouthbrooders, Tropheus form temporary pairs during breeding. The development of eggs and fry occurs exclusively in the mouths of females. Previous phylogeographic studies on Tropheus demonstrated surprisingly large genetic differences between populations. Tropheus duboisi was described as the most ancestral lineage, and seven distinct groups arose mostly simultaneously. Six of them occur in individual littoral areas, and one group secondarily colonized rocky sites throughout the lake. Data obtained from mitochondrial DNA (mtDNA) analysis showed that, despite a generally similar morphology, fish coloration can vary greatly among genetically closely related populations. Conversely, it can be very similar among genetically distant populations of sister species. These observations are partially explained as a result of parallel evolution of similar color patterns through natural selection or as a consequence of spatial contact between two genetically distinct populations following secondary contact and subsequent sorting of the genus when hybrids of these populations and their descendants selectively backcrossed with members of one original population.
Afrikanische Seen haben eine erstaunlich vielfältige Fauna von Buntbarschen hervorgebracht. Der Tanganjikasee, dessen Alter auf 9 bis 12 Millionen Jahre geschätzt wird, ist der älteste ostafrikanische See und beherbergt die morphologisch, genetisch und verhaltensmäßig vielfältigste Gruppe von Buntbarschen. Viele der über 200 beschriebenen Arten teilen sich in geografisch und genetisch unterschiedliche Populationen auf, die sich hauptsächlich in ihrer Färbung unterscheiden. Das endemische Genus Tropheus ist ein hervorragendes Beispiel für dieses Phänomen, mit sechs Arten und über 70 unterschiedlich gefärbten lokalen Varianten, die innerhalb des Genus beschrieben wurden. Abgesehen von Tropheus duboisi ist die Gesamtmorphologie innerhalb dieses Genus sehr ähnlich. Tropheus sind reichlich in der oberen Uferzone in allen Arten von felsigen Biotopen zu finden, wo sie Algen fressen und sich vor Raubtieren verstecken. Sie meiden strikt sandige und schlammige Ufer sowie Flussmündungen. Es wurde nachgewiesen, dass Tropheus sich nicht über weite Strecken bewegen können, insbesondere nicht über freies Wasser, aufgrund ihrer hochspezifischen Umweltanforderungen, der Treue zum Lebensraum und der Territorialität.
Tropheus ist eines der am besten erforschten Gattungen des Sees. Ethologische Studien an Tropheus moori zeigten komplexe Verhaltensmuster und eine hoch entwickelte soziale Organisation. Es gibt keinen ausgeprägten Geschlechtsdimorphismus. Beide Geschlechter verteidigen Territorien, und im Gegensatz zu vielen anderen Maulbrütern bilden Tropheus während der Brutzeit vorübergehende Paare. Die Entwicklung von Eiern und Jungfischen erfolgt ausschließlich im Maul der Weibchen. Frühere phylogeografische Studien zu Tropheus zeigten überraschend große genetische Unterschiede zwischen Populationen. Tropheus duboisi wurde als der ursprünglichste Stamm beschrieben, und sieben verschiedene Gruppen entstanden größtenteils gleichzeitig. Sechs davon kommen in einzelnen Ufergebieten vor, und eine Gruppe besiedelte sekundär felsige Stellen im gesamten See. Die aus der Analyse der mitochondrialen DNA (mtDNA) gewonnenen Daten zeigten, dass die Fischfärbung trotz einer im Allgemeinen ähnlichen Morphologie zwischen genetisch eng verwandten Populationen stark variieren kann. Umgekehrt kann sie zwischen genetisch entfernten Populationen von Schwesterarten sehr ähnlich sein. Diese Beobachtungen werden teilweise als Ergebnis paralleler Evolution ähnlicher Farbmuster durch natürliche Selektion oder als Folge des räumlichen Kontakts zwischen zwei genetisch unterschiedlichen Populationen nach dem sekundären Kontakt und anschließender Sortierung der Gattung erklärt, wenn Hybriden dieser Populationen und ihre Nachkommen selektiv mit Mitgliedern einer ursprünglichen Population zurückgekreuzt wurden.
Maziwa ya Kiafrika yametengeneza aina tofauti sana ya samaki wa cichlid. Ziwa Tanganyika, ambalo umri wake unakadiriwa kuwa kati ya miaka 9 hadi 12 milioni, ni ziwa la Kiafrika la Mashariki lenye kundi la samaki wa cichlid lenye tofauti kubwa kwa upande wa umbo, jenetiki, na tabia. Wengi wa spishi zaidi ya 200 zilizoelezewa zimegawanyika katika idadi tofauti za kijiografia na kijenetiki, zinazotofautiana hasa katika rangi zao. Mfano mzuri wa hii ni jenasi ya Tropheus, ambayo ina spishi 6 na zaidi ya tofauti 70 za mitaa zenye rangi tofauti. Isipokuwa Tropheus duboisi, morfolojia ya jumla katika jenasi hii ni sawa sana. Tropheus wanapatikana sana katika eneo la pwani la juu katika aina zote za makazi ya miamba, wanakula mwani, na kujificha kutoka kwa wawindaji. Wanakwepa pwani zenye mchanga na matope, pamoja na vijito. Imethibitishwa kuwa Tropheus hawawezi kusafiri umbali mrefu, haswa kupitia maji wazi, kama matokeo ya mazingira yao maalum na uaminifu kwa eneo fulani na utaifa.
Tropheus ni moja wapo ya majenasi yanayosomewa zaidi katika ziwa. Masomo ya tabia ya Tropheus moori yameonyesha mifumo mingi ya tabia na shirika kubwa la kijamii. Hakuna tofauti za kujitokeza kwa jinsia. Jinsia zote mbili zinalinda eneo lao na, tofauti na wengi wa papilota wengine, Tropheus hufanya jozi za muda wakati wa uzazi. Maendeleo ya mayai na vifaranga hufanyika kikamilifu kinywani mwa wanawake. Utafiti wa zamani wa phylogeographic wa Tropheus ulionyesha tofauti za kushangaza za kijenetiki kati ya idadi ya watu. Tropheus duboisi ilielezwa kama tawi la awali, na vikundi saba tofauti vilijitokeza kwa kiasi kikubwa wakati huo huo. Sita kati yao zinapatikana katika maeneo ya pwani ya kibinafsi, na kikundi kimoja kilitawanyika sekondari na kuvamia maeneo ya miamba karibu kote ziwa. Takwimu zilizopatikana kutoka kwa uchambuzi wa DNA ya mitokondria (mtDNA) zilionyesha kuwa, licha ya morfolojia kwa ujumla kufanana, rangi ya samaki inaweza kutofautiana sana kati ya idadi za watu zinazohusiana kijenetiki na, kinyume chake, inaweza kuwa sawa sana kati ya idadi za watu sio karibu kijenetiki za spishi ndugu. Mabadiliko haya yanaweza kueleweka kwa sehemu kama matokeo ya mageuzi sawa ya mifano ya rangi ndani ya uteuzi wa asilia au kama matokeo ya mawasiliano ya nafasi kati ya idadi mbili tofauti kijenetiki baada ya mawasiliano ya sekondari na usambazaji wa tena wa jenasi, ambapo mseto wa idadi hizi na watoto wao ulifanyika kwa kiasi kikubwa na wanachama wa idadi moja ya awali.
Historické zmeny jazera
Predpokladá sa, že rýchle formovanie veľkých druhových skupín východoafrických cichlíd spôsobujú abiotické (fyzikálne) faktory, ako geologické procesy a klimatické udalosti, ako aj biologické vlastnosti šíriacich sa organizmov. Niekoľko štúdií ukázalo, že veľké kolísanie hladiny jazera malo vážny vplyv na skalnaté prostredie a druhové spoločenstvá vo východoafrických priekopových jazerách. Jazero bolo vážne ovplyvnené zmenou na suché podnebie asi pred 1,1 miliónmi rokov, čo spôsobilo pokles hladiny asi o 650 – 700 m pod súčasnú hladinu. Potom sa jazero zväčšovalo postupne do obdobia asi pred 550000 rokmi. Ďalší pokles hladiny nastal asi pred 390000 až 360000 rokmi o 360 metrov, medzi 290000 až 260000 rokmi o 350 m a medzi 190000 až 170000 rokmi to bol pokles o 250 m. V najbližšej histórii poklesla hladina počas neskorého pleistocénu ľadovej doby, kedy bolo v Afrike suché podnebie. Ide o obdobie spred 40000 – 35000 rokmi (pokles o 160 m) a medzi 23000 – 18000 rokmi (pravdepodobne o 600 m). Akýkoľvek vzrast hladiny posúva pobrežnú líniu a tvoria sa nové skalnaté oblasti. Len čo vzdialenosti medzi novo formovanými oblasťami prekročia schopnosť šírenia sa jednotlivých druhov, tok génov sa preruší a hromadia sa genetické rozdiely medzi populáciami. Následný pokles hladiny môže viesť k sekundárnemu miešaniu, čo vedie k buď k zvyšujúcej sa genetickej rozdielnosti alebo príbuznosti nových druhov.
Šírenie rodu Tropheus v jazere Tanganika
Na základe genetickej analýzy sa určili 3 obdobia šírenia sa Tropheusov v jazere. Prvé obdobie prebiehalo počas stúpania hladiny v období medzi 1,1 mil. – 550000 rokmi, druhé šírenie prebiehalo počas poklesu hladiny v období medzi 390000 – 360000 rokmi a tretie šírenie nastalo počas poklesu hladiny v období medzi 190000 – 170000 rokmi. Klimatické zmeny pred 17000 rokmi spôsobili dramatický pokles hladiny nielen v Tanganike, ale aj v Malawi a dokonca vyschnutie jazera Viktória. Tieto udalosti synchronizovali procesy diverzifikácie cichlíd vo všetkých troch jazerách. Najdôveryhodnejšie vysvetlenie genetických vzorov Tropheusov sú tri obdobia nízkej hladiny jazera, kedy klesala hladina najmenej o 550 m, takže jazero bolo rozdelené na tri jazerá. Skupiny Tropheusov boli rozdelené do osem hlavných skupín podľa mtDNA a podľa výskytu v jednotlivých lokalitách jazera, ktoré dostali názov podľa osád na pobreží:
Skupina A1 (Kibwe, Kabwe, Kiti Point)
Skupina A2 (Kabezi, Ikola, Bilila Island, Kyeso I./Kungwe – T. “yellow”, Kala, Mpulungu)
Skupina A3 (Nyanza Lac – T. brichardi, Ngombe, Bemba)
Skupina A4 (Nvuna Island, Katoto I.)
Skupina B (Rutunga, Kiriza)
Skupina C (Kyeso II.)
Skupina D (Zongwe, Moba, Kibwesa – T. “Kibwesa”)
Skupina E (Bulu – T. polli, Bulu – T. “Kirschfleck”)
Skupina F (Kibwesa – T. “Kirschfleck”, Mvua I., Inangu)
Skupina G (Wapembe juh, Katoto II., Mvua II.)
Skupina H (Wapembe sever)
Historical changes of the lake
It is assumed that the rapid formation of large species groups of East African cichlids is caused by abiotic (physical) factors such as geological processes and climatic events, as well as biological characteristics of spreading organisms. Several studies have shown that large fluctuations in lake levels had a significant impact on rocky environments and species communities in East African rift lakes. The lake was seriously affected by a shift to a dry climate about 1.1 million years ago, causing a drop in the water level by about 650 – 700 meters below the current level. Then, the lake gradually expanded into the period around 550,000 years ago. Another drop in the water level occurred about 390,000 to 360,000 years ago by 360 meters, between 290,000 and 260,000 years ago by 350 meters, and between 190,000 and 170,000 years ago, there was a drop of 250 meters. In recent history, the lake level dropped during the late Pleistocene ice age when the climate in Africa became arid. This occurred approximately 40,000 – 35,000 years ago (a decrease of 160 meters) and between 23,000 – 18,000 years ago (probably by 600 meters). Any increase in the water level shifts the shoreline, forming new rocky areas. Once the distances between newly formed areas exceed the ability of individual species to spread, the gene flow is interrupted, and genetic differences accumulate between populations. Subsequent drops in the water level can lead to secondary mixing, resulting in either increased genetic diversity or relatedness of new species.
Dissemination of the Tropheus genus in Lake Tanganyika
Based on genetic analysis, three periods of Tropheus spread in the lake have been identified. The first period occurred during the rise in lake levels between 1.1 million – 550,000 years ago, the second spread occurred during the decline in lake levels between 390,000 – 360,000 years ago, and the third spread occurred during the decline in lake levels between 190,000 – 170,000 years ago. Climatic changes around 17,000 years ago caused a dramatic drop in water levels not only in Tanganyika but also in Malawi and even the drying up of Lake Victoria. These events synchronized the processes of cichlid diversification in all three lakes. The most plausible explanation for the genetic patterns of Tropheus involves three periods of low lake levels when the water level dropped by at least 550 meters, causing the lake to be divided into three separate bodies of water. Tropheus groups were divided into eight main groups based on mtDNA and their occurrence in specific lake locations, named after settlements on the shore:
Group A1 (Kibwe, Kabwe, Kiti Point) Group A2 (Kabezi, Ikola, Bilila Island, Kyeso I./Kungwe – T. “yellow”, Kala, Mpulungu) Group A3 (Nyanza Lac – T. brichardi, Ngombe, Bemba) Group A4 (Nvuna Island, Katoto I.) Group B (Rutunga, Kiriza) Group C (Kyeso II.) Group D (Zongwe, Moba, Kibwesa – T. “Kibwesa”) Group E (Bulu – T. polli, Bulu – T. “Kirschfleck”) Group F (Kibwesa – T. “Kirschfleck”, Mvua I., Inangu) Group G (Wapembe south, Katoto II., Mvua II.) Group H (Wapembe north)
Historische Veränderungen des Sees
Es wird vermutet, dass die schnelle Bildung großer Artengruppen ostafrikanischer Buntbarsche durch abiotische (physikalische) Faktoren verursacht wird, wie geologische Prozesse und klimatische Ereignisse, sowie biologische Merkmale sich ausbreitender Organismen. Mehrere Studien haben gezeigt, dass große Schwankungen des Seespiegels ernsthafte Auswirkungen auf die felsige Umgebung und die Artenzusammensetzung in den ostafrikanischen Grabenseen hatten. Der See wurde vor etwa 1,1 Millionen Jahren ernsthaft von einem Wechsel zu einem trockenen Klima beeinflusst, was zu einem Rückgang des Wasserspiegels um etwa 650 – 700 Meter unter das aktuelle Niveau führte. Dann vergrößerte sich der See allmählich bis zur Periode vor etwa 550.000 Jahren. Ein weiterer Rückgang des Wasserspiegels erfolgte vor etwa 390.000 bis 360.000 Jahren um 360 Meter, zwischen 290.000 und 260.000 Jahren um 350 Meter und zwischen 190.000 und 170.000 Jahren erfolgte ein Rückgang um 250 Meter. In der jüngeren Geschichte sank der Wasserspiegel während der späten Eiszeit des Pleistozäns, als das Klima in Afrika trocken wurde. Dies geschah etwa vor 40.000 – 35.000 Jahren (ein Rückgang um 160 Meter) und zwischen 23.000 – 18.000 Jahren (wahrscheinlich um 600 Meter). Jeder Anstieg des Wasserspiegels verschiebt die Küstenlinie und es entstehen neue felsige Gebiete. Sobald die Abstände zwischen den neu entstandenen Gebieten die Ausbreitungsfähigkeit einzelner Arten überschreiten, wird der Genaustausch unterbrochen und genetische Unterschiede zwischen Populationen sammeln sich an. Ein anschließender Rückgang des Wasserspiegels kann zu sekundärer Durchmischung führen, was entweder zu einer erhöhten genetischen Vielfalt oder Verwandtschaft neuer Arten führt.
Verbreitung der Gattung Tropheus im Tanganjikasee
Basierend auf genetischen Analysen wurden drei Zeiträume der Verbreitung von Tropheus im See identifiziert. Die erste Periode erfolgte während des Anstiegs des Seespiegels zwischen 1,1 Millionen und 550.000 Jahren, die zweite Verbreitung erfolgte während des Rückgangs des Seespiegels zwischen 390.000 und 360.000 Jahren und die dritte Verbreitung erfolgte während des Rückgangs des Seespiegels zwischen 190.000 und 170.000 Jahren. Klimatische Veränderungen vor 17.000 Jahren führten zu einem dramatischen Rückgang des Wasserspiegels nicht nur im Tanganjika, sondern auch im Malawi-See und sogar zum Austrocknen des Viktoriasees. Diese Ereignisse synchronisierten die Prozesse der Cichlidendiversifikation in allen drei Seen. Die plausibelste Erklärung für die genetischen Muster von Tropheus umfasst drei Perioden niedriger Wasserstände, bei denen der Wasserstand um mindestens 550 Meter sank und der See in drei separate Gewässer aufgeteilt wurde. Die Tropheus-Gruppen wurden in acht Hauptgruppen unterteilt, basierend auf mtDNA und ihrem Vorkommen an bestimmten Seeorten, benannt nach Siedlungen am Ufer:
Gruppe A1 (Kibwe, Kabwe, Kiti Point) Gruppe A2 (Kabezi, Ikola, Bilila Island, Kyeso I./Kungwe – T. “yellow”, Kala, Mpulungu) Gruppe A3 (Nyanza Lac – T. brichardi, Ngombe, Bemba) Gruppe A4 (Nvuna Island, Katoto I.) Gruppe B (Rutunga, Kiriza) Gruppe C (Kyeso II.) Gruppe D (Zongwe, Moba, Kibwesa – T. “Kibwesa”) Gruppe E (Bulu – T. polli, Bulu – T. “Kirschfleck”) Gruppe F (Kibwesa – T. “Kirschfleck”, Mvua I., Inangu) Gruppe G (Wapembe südlich, Katoto II., Mvua II.) Gruppe H (Wapembe nördlich)
Swahili: Mabadiliko ya Historia katika Ziwa
Inaaminiwa kwamba kuundwa haraka kwa vikundi vikubwa vya spishi za Cichlid za Afrika Mashariki kunachangiwa na mambo ya abiotiki (kimwili), kama vile mchakato wa kijiolojia na matukio ya hali ya hewa, pamoja na sifa za kibaolojia za viumbe vinavyoenea. Utafiti kadhaa umefunua kuwa mabadiliko makubwa ya kiwango cha maji yalikuwa na athari kubwa kwenye mazingira ya miamba na jumuiya ya spishi katika maziwa ya bonde la Ufa la Afrika Mashariki. Ziwa lilipata athari kubwa kutokana na mabadiliko ya hali ya hewa kavu karibu miaka 1.1 milioni iliyopita, ikisababisha kupungua kwa kiwango cha maji kwa takriban mita 650 – 700 chini ya kiwango cha sasa. Kisha ziwa likaongezeka polepole hadi kipindi cha miaka takriban 550,000 iliyopita. Kupungua kwa kiwango kingine kilifanyika takriban miaka 390,000 hadi 360,000 iliyopita kwa mita 360, kati ya miaka 290,000 hadi 260,000 iliyopita kwa mita 350, na kati ya miaka 190,000 hadi 170,000 iliyopita kwa kupungua kwa mita 250. Katika historia ya karibu, kiwango cha maji kilipungua wakati wa kipindi cha Pleistocene mwishoni, wakati hali ya hewa ilipokuwa kavu barani Afrika. Hii ilitokea karibu miaka 40,000 – 35,000 iliyopita (kipungua kwa mita 160) na kati ya miaka 23,000 – 18,000 iliyopita (labda kwa mita 600). Ongezeko lolote la kiwango cha maji kunasogeza pwani na kusababisha maeneo mapya ya miamba. Mara tu umbali kati ya maeneo mapya yaliyoletwa unapovuka uwezo wa kusambaa kwa spishi binafsi, mzunguko wa jeni unakatishwa na tofauti za kijenetiki hukusanyika kati ya idadi ya watu. Kupungua kwa kiwango cha maji baadaye kunaweza kusababisha kuchanganyika kwa sekondari, ambayo inaongoza kwa kuongezeka kwa tofauti za kijenetiki au uhusiano wa karibu kati ya spishi mpya.
Uenezi wa Jeni la Tropheus katika Ziwa Tanganyika
Kulingana na uchambuzi wa jenetiki, kumekuwa na vipindi vitatu vya uenezi wa Tropheus katika ziwa. Kipindi cha kwanza kilifanyika wakati wa ongezeko la kiwango cha maji kati ya miaka milioni 1.1 hadi 550,000 iliyopita, uenezi wa pili ulifanyika wakati wa kupungua kwa kiwango cha maji kati ya miaka 390,000 hadi 360,000 iliyopita, na uenezi wa tatu ulitokea wakati wa kupungua kwa kiwango cha maji kati ya miaka 190,000 hadi 170,000 iliyopita. Mabadiliko ya hali ya hewa miaka 17,000 iliyopita yalisababisha kupungua kwa kasi kwa kiwango cha maji siyo tu katika Tanganyika, bali pia katika Ziwa Malawi na hata kukausha Ziwa Viktoria. Matukio haya yalisawazisha mchakato wa utofautishaji wa Cichlid katika maziwa yote matatu. Maelezo yanayoweza kueleweka zaidi ya mifumo ya kijenetiki ya Tropheus yanajumuisha vipindi vitatu vya viwango vya chini vya maji, ambapo kiwango kilipungua kwa angalau mita 550, hivyo ziwa likigawanywa katika maziwa matatu tofauti. Vikundi vya Tropheus viligawanywa katika vikundi vitatu vikuu, kulingana na mtDNA na mzunguko wao kwenye maeneo maalum ya ziwa, vilivyopewa majina ya vitongoji kwenye pwani:
Kikundi A1 (Kibwe, Kabwe, Kiti Point) Kikundi A2 (Kabezi, Ikola, Bilila Island, Kyeso I./Kungwe – T. “yellow”, Kala, Mpulungu) Kikundi A3 (Nyanza Lac – T. brichardi, Ngombe, Bemba) Kikundi A4 (Nvuna Island, Katoto I.) Kikundi B (Rutunga, Kiriza) Kikundi C (Kyeso II.) Kikundi D (Zongwe, Moba, Kibwesa – T. “Kibwesa”) Kikundi E (Bulu – T. polli, Bulu – T. “Kirschfleck”) Kikundi F (Kibwesa – T. “Kirschfleck”, Mvua I., Inangu) Kikundi G (Wapembe kusini, Katoto II., Mvua II.) Kikundi H (Wapembe kaskazini)
Na obrázku sú znázornené vzťahy medzi jednotlivými skupinami rodu Tropheus a ich lokalizácia v jazere.
The relationships between individual groups of the genus Tropheus and their locations in the lake are illustrated in the picture.
Auf dem Bild sind die Beziehungen zwischen den einzelnen Gruppen der Gattung Tropheus und deren Standorten im See dargestellt.
Katika picha, uhusiano kati ya vikundi binafsi vya jenasi ya Tropheus na maeneo yao katika ziwa unavyoonyeshwa.
Primárne šírenie rodu Tropheus bolo podmienené silným zvýšením hladiny jazera asi pred 700000 rokmi. Prvé dve skupiny (A a B) pochádzali z obsadenia severných častí jazera, skupina C a D vznikala na západnom pobreží centrálnej časti jazera a skupina E sa rozvíjala na východe strednej časti jazera. Skupiny F, G a H sa najpravdepodobnejšie udomácnili na juhu jazera. Treba upozorniť, že nedávno objavená ôsma skupina C v Kyeso pravdepodobne reprezentuje Tropheus annectens, pretože Kyeso je lokalizované v tesnej blízkosti typu vzoriek rýb, ktorý popísal Boulenger v roku 1990. Tieto ryby žili v blízkosti rýb, ktoré patria do skupiny A2, ktorú objavili na oboch stranách centrálnej časti jazera.
Morfologické analýzy ukázali, že šesť zo siedmich jedincov malo štyri lúče na análnej plutve a siedmy jedinec mal lúčov päť. Ďalších pať jedincov ulovených v Kyeso malo šesť análnych lúčov a tiež sa odlišovali v tvare úst a sfarbení od T. annectens. Je zaujímavé, že ryby odchytené v lokalite Kyeso predtým označené ako T. annectens patria do skupiny C na rozdiel od Tropheus polli (skupina E) z opačnej strany jazera, hoci majú podobnú morfológiu, počet lúčov análnej plutvy a sfarbenie.
The primary spread of the genus Tropheus was conditioned by a significant increase in the lake level around 700,000 years ago. The first two groups (A and B) originated from the occupation of the northern parts of the lake, groups C and D developed on the western shore of the central part of the lake, and group E evolved in the east of the central part of the lake. Groups F, G, and H most likely became established in the south of the lake. It should be noted that the recently discovered eighth group C in Kyeso probably represents Tropheus annectens, as Kyeso is located in close proximity to the type samples of fish described by Boulenger in 1990. These fish lived near fish belonging to group A2, which was discovered on both sides of the central part of the lake.
Morphological analyses showed that six out of seven individuals had four rays on the anal fin, and the seventh individual had five rays. Another five individuals caught in Kyeso had six anal rays and also differed in mouth shape and coloration from T. annectens. Interestingly, the fish caught at the Kyeso site previously identified as T. annectens belong to group C, unlike Tropheus polli (group E) from the opposite side of the lake, although they have similar morphology, the number of anal fin rays, and coloration.
Die primäre Verbreitung der Gattung Tropheus wurde durch einen signifikanten Anstieg des Seespiegels vor etwa 700.000 Jahren bedingt. Die ersten beiden Gruppen (A und B) stammten von der Besiedlung der nördlichen Teile des Sees, Gruppen C und D entwickelten sich am westlichen Ufer des zentralen Teils des Sees, und Gruppe E entstand im Osten des zentralen Teils des Sees. Gruppen F, G und H haben sich höchstwahrscheinlich im Süden des Sees angesiedelt. Es ist zu beachten, dass die kürzlich entdeckte achte Gruppe C in Kyeso wahrscheinlich Tropheus annectens repräsentiert, da Kyeso in unmittelbarer Nähe der von Boulenger im Jahr 1990 beschriebenen Typusproben von Fischen liegt. Diese Fische lebten in der Nähe von Fischen, die zur Gruppe A2 gehören, die auf beiden Seiten des zentralen Teils des Sees entdeckt wurde.
Morphologische Analysen zeigten, dass sechs von sieben Individuen vier Strahlen auf der Afterflosse hatten und das siebte Individuum fünf Strahlen hatte. Weitere fünf in Kyeso gefangene Individuen hatten sechs Afterflossenstrahlen und unterschieden sich auch in der Form des Mauls und der Färbung von T. annectens. Interessanterweise gehören die in der Kyeso-Stelle gefangenen Fische, die zuvor als T. annectens identifiziert wurden, zur Gruppe C, im Gegensatz zu Tropheus polli (Gruppe E) von der gegenüberliegenden Seite des Sees, obwohl sie eine ähnliche Morphologie, Anzahl der Afterflossenstrahlen und Färbung haben.
Usambazaji wa kwanza wa jenasi ya Tropheus ulitokana na ongezeko kubwa la kiwango cha ziwa takribani miaka 700,000 iliyopita. Vikundi vya kwanza viwili (A na B) vilianzia na eneo la kaskazini la ziwa, vikundi C na D vilijitokeza kwenye pwani ya magharibi ya sehemu ya kati ya ziwa, na kundi E likaendelea mashariki mwa sehemu ya kati ya ziwa. Vikundi F, G, na H huenda vilianza kujitokeza kusini mwa ziwa. Ni muhimu kutambua kuwa kundi la nane lililogunduliwa hivi karibuni C huko Kyeso linawakilisha Tropheus annectens, kwani Kyeso iko karibu na sampuli za aina za samaki zilizoelezewa na Boulenger mwaka 1990. Samaki hawa walikuwa karibu na samaki wanaoangukia kwenye kundi A2, ambalo lilibainika pande zote mbili za sehemu ya kati ya ziwa.
Uchambuzi wa umbo ulionyesha kuwa sita kati ya saba ya watu walikuwa na tindi nne kwenye fini ya haja, na mmoja alikuwa na tindi tano. Watu wengine watano waliokamatwa Kyeso walikuwa na tindi sita kwenye fini ya haja na pia walitofautiana kwenye umbo la mdomo na rangi na T. annectens. Kuvutia, samaki waliokamatwa eneo la Kyeso awali walioitwa T. annectens wanahusiana na kundi C, tofauti na Tropheus polli (kundi E) upande mwingine wa ziwa, ingawa wana umbo sawa, idadi ya tindi kwenye fini ya haja, na rangi.
Väčšina hlavných skupín sa rozširovala do susedných oblastí počas druhého rozšírenia asi pred 400000 rokmi a skupiny A a D zvládli presun k protiľahlému pobrežiu centrálnej časti Tanganiky. V tomto období sa po obsadení východného pobrežia skupina A rozdelila na 4 odlišné podskupiny. Podskupiny A1 a A3 sa pravdepodobne objavili po expanzii na východe severného pobrežia. Podskupina A2 pochádzala z obsadenia severozápadného pobrežia na severe aj v strednej časti jazera, zatiaľ čo podskupina A4 pravdepodobne pochádzala z kolonizácie východnej časti južného pobrežia. Skupina D pravdepodobne obsadila veľmi krátky úsek v oblasti Cape Kibwesa, kam sa presídlili zo západnej časti južného pobrežia. To bolo možné jedine v období pred 400000 rokmi, keď klesla hladina o 550 m, pretože Tropheusy nie sú schopné sa presúvať pri zvýšení vodnej hladiny a tým aj zväčšení vzdialeností medzi skalnatými časťami jazera cez voľnú vodu. Iba pokles hladiny o 550 m postačoval na to, aby sa skalnaté dno dostalo do hĺbky asi 50 m, čím sa utvorili podmienky na presun Tropheusov.
Rozšírenie Tropheus“Kirschfleck”, ktoré patria do skupiny F na východnom pobreží centrálnej časti jazera a na sever od Kibwesa, sa zdá byť záhadné podľa súčasného rozšírenia ostatných členov tejto skupiny (F) na juhozápade okolo Cameron Bay. V oblasti Kibwesa žijú v blízkosti tri varianty Tropheusov (Tropheus polli, T.“Kibwesa” a T.“Kirschfleck”). Predsa však vo vzorkách T.“Kirschfleck” sa zistilo podľa mtDNA, že patrili dvom skupinám, čo naznačuje kríženie pravdepodobne pôvodných obyvateľov tejto oblasti – skupiny T. polli (E) a presídlených T. “Kirschfleck” (F). Existujú dve alternatívy: zástupcovia skupiny F sa mohli presunúť pozdĺž západnej časti južného pobrežia až k hranici strednej časti jazera. Zostáva však nejasné, ako sa mohla skupina F presunúť cez tak širokú oblasť strmo klesajúceho pobrežia na západe južného pobrežia, ktoré v súčasnosti obývajú ryby skupiny D, bez toho aby zanechali nejakú genetickú stopu alebo menšiu populáciu. Alternatívne vysvetlenie by mohlo byť, že skupina F sa pôvodne šírila pozdĺž juhovýchodného pobrežia od Kibwesa asi po Wapembe a neskôr bola nahradená presídlenými zástupcami skupiny A, takže haplotypy (skupina alel v jednom chromozóme prenášaná z generácie na generáciu spoločne, pričom potomok dedí dva haplotypy – jeden od otca a druhý od matky) skupiny F v Kibwesa sú pozostatky pôvodne podstatne rozšírenejšej skupiny. Ďalej by k tejto hypotéze bolo možné dodať, že skupina F druhotne osídlila ich súčasné teritórium v okolí Cameron Bay na juhozápade počas hlavného obdobia stúpania hladiny jazera pred 400000 rokmi. To by vysvetľovalo prítomnosť dvoch odlišných haplotypov v populácii v Mvua (F a G), ako následok kríženia po druhotnom kontakte so zástupcami skupiny F. Ak je táto hypotéza pravdivá, táto kolonizácia mohla úplne nahradiť predtým sa vyskytujúcu skupinu G, ktorá má v súčasnosti centrum výskytu južne od ústia rieky Lufubu. Ak berieme do úvahy fakt, že rieka Lufubu, ako tretí najväčší zdroj vody pre jazero, predstavuje vysoko stabilnú ekologickú bariéru, ktorá oddeľuje pobrežie hory Chaitika od poloostrova Inangu, potom skupina G si mohla udržiavať oblasť pôvodného rozšírenia južne od rieky Lufubu, ale bola nahradená zástupcami skupiny F v Cameron Bay po poklese hladiny.
Počas tretieho šírenia asi pred 200000 rokmi sa šírili 3 podskupiny skupiny A pozdĺž pobrežia, kde sa pôvodne vyskytovali. Podskupina A2 sa musela premiestniť krížom cez jazero z južného okraja centrálnej časti na východné pobrežie južnej časti jazera. Podskupiny A2 a A4 sa rozšírili pozdĺž juhovýchodného pobrežia viac na juh jazera. V lokalite Wapembe na severe sa u jedného jedinca zistil haplotyp, podľa ktorého patrí do skupiny H, ktorá sa rozšírila pri primárnom šírení a všetky ďalšie jedince parili do dvoch podskupín A. Dva odlišné Tropheusy žijú v blízko príbuznom vzťahu blízko Wapembe. V Katoto, hlavnej hranici medzi skupinami A a G sa zistilo asi 50 % populácie s haplotypom skupiny G a 50% z podskupín A2 a A4. Podskupina A2 sa zistila aj v lokalite Katukula, ale táto populácia je tvorená prevažne rybami zo skupiny G.
Most of the main groups expanded into adjacent areas during the second expansion around 400,000 years ago, and groups A and D managed to move to the opposite shore of the central part of Lake Tanganyika. During this period, after occupying the eastern shore, group A split into four distinct subgroups. Subgroups A1 and A3 likely emerged after expanding to the east of the northern shore. Subgroup A2 originated from the occupation of the northwest shore in the north and central parts of the lake, while subgroup A4 probably resulted from the colonization of the eastern part of the southern shore. Group D likely occupied a very short section near Cape Kibwesa, migrating from the western part of the southern shore. This was only possible around 400,000 years ago when the lake level dropped by 550 meters, as Tropheus cannot move during rising water levels, which would increase distances between rocky parts of the lake over open water. Only a drop in the level by 550 meters was sufficient for the rocky bottom to reach a depth of about 50 meters, creating conditions for the movement of Tropheus.
The expansion of Tropheus “Kirschfleck,” belonging to group F, on the eastern shore of the central part of the lake and north of Kibwesa, seems mysterious compared to the current distribution of other members of this group (F) to the southwest around Cameron Bay. In the Kibwesa area, three Tropheus variants (Tropheus polli, T. “Kibwesa,” and T. “Kirschfleck”) live in close proximity. However, in T. “Kirschfleck” samples, two groups were identified according to mtDNA, indicating crossbreeding between probably original inhabitants of this area – T. polli (E) group and relocated T. “Kirschfleck” (F) group. There are two alternatives: representatives of group F could have moved along the western part of the southern shore to the border of the central part of the lake. However, it remains unclear how group F could have moved across such a wide area of steeply descending western shore on the southern coast, currently inhabited by fish from group D, without leaving any genetic trace or a smaller population. Alternatively, the group F might have initially spread along the southeastern shore from Kibwesa to Wapembe and later was replaced by relocated representatives of group A, so haplotypes (a group of alleles on one chromosome passed from generation to generation together, with offspring inheriting two haplotypes – one from the father and one from the mother) of group F in Kibwesa are remnants of the originally much more extensive group. Furthermore, according to this hypothesis, group F might have secondary colonized their current territory around Cameron Bay in the southwest during the main period of rising lake levels before 400,000 years ago. This would explain the presence of two different haplotypes in the population in Mvua (F and G) as a result of crossbreeding after secondary contact with representatives of group F. If this hypothesis is true, this colonization could have completely replaced the previously occurring group G, which currently has the center of occurrence south of the Lufubu River estuary. Considering the fact that the Lufubu River, as the third-largest source of water for the lake, represents a highly stable ecological barrier separating the coast of the Chaitika Mountains from the Inangu Peninsula, then group G could have maintained the area of the original distribution south of the Lufubu River but was replaced by representatives of group F in Cameron Bay after the drop in the lake level.
During the third expansion around 200,000 years ago, three subgroups of group A spread along the coast where they originally occurred. Subgroup A2 had to move across the lake from the southern edge of the central part to the eastern shore of the southern part of the lake. Subgroups A2 and A4 extended along the southeastern coast further to the south of the lake. In the Wapembe location in the north, one individual was found to have a haplotype belonging to group H, which spread during the primary expansion, and all other individuals paired into two subgroups A. Two distinct Tropheus individuals live in close proximity in the relative relationship near Wapembe. In Katoto, the main boundary between groups A and G, about 50% of the population was found with a haplotype of group G and 50% from subgroups A2 and A4. Subgroup A2 was also found in the Katukula location, but this population is mainly composed of fish from group G.
Die Mehrheit der Hauptgruppen erweiterte sich während der zweiten Ausbreitung vor etwa 400.000 Jahren in benachbarte Gebiete, und die Gruppen A und D schafften es, zur gegenüberliegenden Küste des zentralen Teils des Tanganjikasees zu gelangen. Während dieser Periode, nach der Besetzung der östlichen Küste, spaltete sich Gruppe A in vier verschiedene Untergruppen. Die Untergruppen A1 und A3 entstanden wahrscheinlich nach der Expansion nach Osten entlang der nördlichen Küste. Die Untergruppe A2 stammte aus der Besetzung der nordwestlichen Küste im Norden und in der Mitte des Sees, während die Untergruppe A4 wahrscheinlich aus der Kolonisierung des östlichen Teils der südlichen Küste resultierte. Gruppe D besetzte wahrscheinlich einen sehr kurzen Abschnitt in der Nähe von Cape Kibwesa, wanderte von der westlichen Seite der südlichen Küste aus. Dies war nur möglich vor etwa 400.000 Jahren, als der Seespiegel um 550 Meter sank, da sich Tropheus während steigender Wasserstände nicht bewegen kann, was die Entfernungen zwischen den felsigen Teilen des Sees über freies Wasser erhöhen würde. Nur ein Abfall des Pegels um 550 Meter reichte aus, damit der felsige Boden eine Tiefe von etwa 50 Metern erreichte und Bedingungen für die Bewegung von Tropheus geschaffen wurden.
Die Ausbreitung von Tropheus “Kirschfleck”, die zur Gruppe F gehört, an der östlichen Küste des zentralen Teils des Sees und nördlich von Kibwesa, scheint im Vergleich zur aktuellen Verteilung anderer Mitglieder dieser Gruppe (F) im Südwesten um Cameron Bay mysteriös zu sein. In der Gegend von Kibwesa leben drei Tropheus-Varianten (Tropheus polli, T. “Kibwesa” und T. “Kirschfleck”) in unmittelbarer Nähe. In den Proben von T. “Kirschfleck” wurden jedoch zwei Gruppen gemäß mtDNA identifiziert, was auf eine Kreuzung zwischen wahrscheinlich ursprünglichen Bewohnern dieses Gebiets – Gruppe T. polli (E) und umgesiedelten T. “Kirschfleck” (F) – hinweist. Es gibt zwei Alternativen: Vertreter der Gruppe F hätten sich entlang der westlichen Seite der südlichen Küste bis an die Grenze des zentralen Teils des Sees bewegen können. Es bleibt jedoch unklar, wie die Gruppe F über eine so weite Fläche steil abfallender westlicher Küste an der Südküste hätte wandern können, die derzeit von Fischen der Gruppe D bewohnt wird, ohne dabei genetische Spuren oder eine kleinere Population zu hinterlassen. Als Alternative könnte die Gruppe F sich ursprünglich entlang der südöstlichen Küste von Kibwesa bis nach Wapembe ausgebreitet haben und wurde später durch umgesiedelte Vertreter der Gruppe A ersetzt. Daher sind Haplotypen (eine Gruppe von Allelen auf einem Chromosom, die von Generation zu Generation gemeinsam weitergegeben werden, wobei der Nachkomme zwei Haplotypen erbt – einen vom Vater und einen von der Mutter) der Gruppe F in Kibwesa Überreste der ursprünglich viel umfangreicheren Gruppe. Darüber hinaus könnte nach dieser Hypothese die Gruppe F während der Hauptperiode des Anstiegs des Seespiegels vor 400.000 Jahren ihr derzeitiges Territorium um Cameron Bay im Südwesten sekundär kolonisiert haben. Dies würde die Anwesenheit von zwei verschiedenen Haplotypen in der Bevölkerung in Mvua (F und G) als Ergebnis von Kreuzung nach dem sekundären Kontakt mit Vertretern der Gruppe F erklären. Wenn diese Hypothese wahr ist, könnte diese Kolonisierung die zuvor auftretende Gruppe G vollständig ersetzt haben, die derzeit das Zentrum des Auftretens südlich der Mündung des Flusses Lufubu hat. Angesichts der Tatsache, dass der Fluss Lufubu als drittgrößte Wasserquelle für den See eine sehr stabile ökologische Barriere darstellt, die die Küste der Chaitika-Berge von der Inangu-Halbinsel trennt, könnte die Gruppe G das Gebiet der ursprünglichen Verbreitung südlich des Flusses Lufubu beibehalten haben, wurde aber durch Vertreter der Gruppe F in Cameron Bay nach dem Rückgang des Seespiegels ersetzt.
Während der dritten Ausbreitung vor etwa 200.000 Jahren breiteten sich drei Untergruppen der Gruppe A entlang der Küste aus, wo sie ursprünglich vorkamen. Die Untergruppe A2 musste über den See vom südlichen Rand des zentralen Teils zur östlichen Küste des südlichen Teils des Sees ziehen. Die Untergruppen A2 und A4 erstreckten sich entlang der südöstlichen Küste weiter nach Süden. Am Standort Wapembe im Norden wurde bei einem Individuum ein Haplotyp gefunden, der zur Gruppe H gehört, die sich während der primären Ausbreitung verbreitete, und alle anderen Individuen paarten sich in zwei Untergruppen A. Zwei verschiedene Tropheus-Individuen leben in unmittelbarer Nähe in der relativen Beziehung nahe Wapembe. In Katoto, der Hauptgrenze zwischen den Gruppen A und G, wurde bei etwa 50% der Bevölkerung ein Haplotyp der Gruppe G und bei 50% aus den Untergruppen A2 und A4 festgestellt. Die Untergruppe A2 wurde auch am Standort Katukula gefunden, aber diese Population besteht hauptsächlich aus Fischen der Gruppe G.
Zaidi ya makundi makuu yalisambaa katika maeneo jirani wakati wa upanuzi wa pili takribani miaka 400,000 iliyopita, na makundi A na D yalifanikiwa kuhamia upande wa pili wa pwani ya katikati ya Ziwa Tanganyika. Katika kipindi hiki, baada ya kuhamia pwani ya mashariki, kundi la A liligawanyika katika vikundi 4 tofauti. Vikundi A1 na A3 labda vilijitokeza baada ya upanuzi upande wa mashariki wa pwani ya kaskazini. Kikundi cha A2 kilianzia uvamizi wa pwani ya kaskazini-magharibi kaskazini na katikati mwa ziwa, wakati kikundi cha A4 kilipatikana kutokana na ukoloni wa sehemu ya mashariki ya pwani ya kusini. Kikundi cha D kilichukua kwa uwezekano sehemu fupi sana katika eneo la Cape Kibwesa, kikihamia kutoka sehemu ya magharibi ya pwani ya kusini. Hii ilikuwa ni wakati wa pekee karibu miaka 400,000 iliyopita, ambapo kiwango cha maji kilishuka kwa mita 550. Tropheus hawawezi kuhamia wakati wa ongezeko la kiwango cha maji, hivyo kuongezeka kwa umbali kati ya sehemu za miamba za ziwa juu ya maji wazi. Kupungua kwa mita 550 tu kulitosha kwa sakafu ya miamba kufikia kina cha takribani mita 50, kuunda mazingira ya uhamiaji wa Tropheus.
Usambazaji wa Tropheus “Kirschfleck,” wanaopatikana kwenye kundi F kwenye mwambao wa mashariki wa sehemu ya kati ya ziwa na kaskazini mwa Kibwesa, unaonekana kuwa wa kisiri kulingana na usambazaji wa sasa wa wanachama wengine wa kundi hili (F) kusini magharibi mwa Cameron Bay. Kwenye eneo la Kibwesa, kuna aina tatu za Tropheus (Tropheus polli, T.“Kibwesa,” na T.“Kirschfleck”) wanaoishi karibu. Hata hivyo, kwenye sampuli za T.“Kirschfleck,” kulingana na mtDNA, walikuwa sehemu ya makundi mawili, ikionyesha mchanganyiko kati ya wakazi wa awali wa eneo hili – kundi la T. polli (E) na T. “Kirschfleck” waliohamishwa (F). Kuna njia mbili mbadala: wawakilishi wa kundi F wangeweza kuhama kando ya pwani ya kusini magharibi hadi mpaka wa sehemu ya kati ya ziwa. Hata hivyo, inabaki wazi jinsi kundi F lilivyoweza kuhamia eneo kubwa la pwani ya kusini magharibi inayoshuka kwa kasi, ambayo kwa sasa inakaliwa na samaki wa kundi D, bila kuacha ishara yoyote ya kijenetiki au idadi ndogo ya watu. Maelezo mbadala yanaweza kuwa kwamba kundi F awali lilisambaa kando ya pwani ya kusini mashariki kutoka Kibwesa hadi Wapembe na baadaye likachukuliwa na wawakilishi wa kundi A, hivyo haplotypes (kundi la aleli kwenye kromosomu moja linalopitishwa pamoja kutoka kizazi hadi kizazi, na uzao unarithi haplotypes mbili – moja kutoka kwa baba na nyingine kutoka kwa mama) za kundi F huko Kibwesa ni mabaki ya kundi lililosambaa awali kwa kiasi kikubwa. Zaidi ya hayo, kwa nadharia hii, inaweza kuongezwa kwamba kundi F kilikalia tena eneo lake la sasa karibu na Cameron Bay kusini magharibi wakati wa kipindi kikuu cha ongezeko la kiwango cha maji ya ziwa takriban miaka 400,000 iliyopita. Hii ingeeleza uwepo wa haplotypes mbili tofauti katika idadi ya watu ya Mvua (F na G) kama matokeo ya mchanganyiko baada ya mawasiliano ya pili na wawakilishi wa kundi F. Ikiwa nadharia hii ni kweli, ukoloni huu ungeweza kuchukua nafasi kabisa kundi lililokuwepo hapo awali la G, ambalo kwa sasa lina kitovu cha usambazaji kusini mwa mdomo wa Mto Lufubu. Kwa kuzingatia ukweli kwamba Mto Lufubu, kama chanzo cha tatu kikubwa cha maji kwa ziwa, inawakilisha kizuizi cha ekolojia kilichojengwa vizuri kinachotenganisha pwani ya Mlima Chaitika na Rasi ya Inangu, basi kundi la G lingeweza kudumisha eneo la usambazaji la awali kusini mwa Mto Lufubu lakini likachukuliwa na wawakilishi wa kundi F huko Cameron Bay baada ya kupungua kwa viwango vya maji.
Wakati wa kuenea kwa tatu karibu miaka 200,000 iliyopita, vikundi vitatu vya kundi A vilisambaa pwani ambapo awali vilikuwepo. Kikundi cha A2 kililazimika kuhamia upande wa pili wa ziwa kutoka kwenye ukingo wa kusini wa sehemu ya kati hadi pwani ya mashariki ya sehemu ya kusini ya ziwa. Vikundi vya A2 na A4 vilisambaa kando ya pwani ya kusini mashariki zaidi ya ziwa. Katika eneo la Wapembe kaskazini, mtu mmoja aligunduliwa kuwa na haplotyping inayomilikiwa na kundi H, ambayo ilisambaa wakati wa kuenea kwa kwanza, na watu wote wengine walipangwa katika vikundi viwili vya A. Tropheus wawili tofauti wanaweza kuonekana wanaishi katika uhusiano wa karibu karibu na Wapembe. Katika eneo la Katoto, mpaka mkuu kati ya vikundi vya A na G, takriban 50% ya idadi ya watu walikuwa na haplotyping ya kundi G, na 50% walikuwa na vikundi vya A2 na A4. Kikundi cha A2 pia kiligunduliwa katika eneo la Katukula, lakini idadi ya watu hii kwa kiasi kikubwa inajumuisha samaki kutoka kundi la G.
Súhrn
Tropheusy 7 skupín nezmenili dramaticky ich rozpätie výskytu, čo môže byť kvôli stabilite ich životného prostredia, ktoré je tvorené kolmo klesajúcim pobrežím. Tieto oblasti neboli príliš ovplyvnené kolísaním hladiny jazera, pretože sa presúvali iba smerom dolu a hore pozdĺž útesov. Jedna podskupina (A2) sa zistila takmer po celom jazere a aj jedinci zo vzdialených populácií sú v úzkom vzťahu. Keďže sa zistili podobné charakteristiky rozšírenia aj iných rodov tanganických cichlíd (Eretmodus, Cyprichromis), pravdepodobne mali zmeny v jazere (klimatické a geologické) podobný vplyv na genetickú štruktúru populácií aj iných druhov.
Summary
The seven groups of Tropheus have not dramatically changed their distribution range, which may be attributed to the stability of their environment characterized by vertically descending coastlines. These areas were less affected by fluctuations in the lake’s water level, as the Tropheus moved only up and down along the cliffs. One subgroup (A2) was found almost throughout the entire lake, and individuals from distant populations show close relationships. Similar distribution characteristics have been observed in other genera of Tanganyikan cichlids (Eretmodus, Cyprichromis), suggesting that changes in the lake (climatic and geological) likely had a similar impact on the genetic structure of populations of other species.
Zusammenfassung
Die sieben Gruppen von Tropheus haben ihre Verbreitungsbereiche nicht dramatisch verändert, was auf die Stabilität ihrer Umgebung zurückzuführen sein könnte, die durch senkrecht abfallende Küsten geprägt ist. Diese Gebiete wurden von Schwankungen des Seewasserspiegels wenig beeinflusst, da sich die Tropheus nur auf und ab entlang der Klippen bewegten. Eine Untergruppe (A2) wurde fast im gesamten See gefunden, und Individuen aus entfernten Populationen zeigen enge Verbindungen. Da ähnliche Verbreitungsmerkmale auch bei anderen Gattungen der Tanganjika-Buntbarsche (Eretmodus, Cyprichromis) festgestellt wurden, deutet dies darauf hin, dass Veränderungen im See (klimatische und geologische) wahrscheinlich einen ähnlichen Einfluss auf die genetische Struktur von Populationen anderer Arten hatten.
Muhtasari
Tropheus wa makundi 7 hawajabadilisha sana eneo lao la usambazaji, ambalo linaweza kuwa kutokana na utulivu wa mazingira yao yanayotokana na pwani inayoshuka wima. Maeneo haya hayakuathiriwa sana na mabadiliko ya kiwango cha ziwa, kwani Tropheus walisonga tu juu na chini kando ya miamba. Kundi moja (A2) lilipatikana karibu kote ziwa, na watu binafsi kutoka makundi ya mbali pia wanashiriki uhusiano wa karibu. Kwa kuwa sifa sawa za usambazaji zimeonekana pia kwa majenasi mengine wa cichlids wa Tanganyika (Eretmodus, Cyprichromis), ni kwa kiasi kikubwa kwamba mabadiliko katika ziwa (ya hali ya hewa na kijiolojia) yalikuwa na athari sawa kwenye muundo wa kijenetiki wa jamii za spishi nyingine.
Literatúra
Baric, S. et al.: Phylogeography and evolution of the Tanganyikan cichlid genus Tropheus based upon mitochondrial DNA saquences. J. Mol. Evol., 56, 2003, 54 – 68. Cohen, A.S., Soreghan, M.R., Scholz, C.A.: Estimanting the age of formation of lakes: An example from Lake Tanganyika, East African Rift System. Geology, 21, 1993, 511 – 514. Cohen, A.S. et al.: New palaeogeographic and lake-level reconstructions of Lake Tanganyika: Implications for tectonic climatic and biological evolution in a rift lake. Basin Res., 9, 1997, 107 – 132. Gasse, F. et al.: Water level fluctuations of Lake Tanganyika in phase with oceanic changes during the last glaciation and deglaciation. Nature, 342, 1989, 57 – 59. Sturmbauer, C.: Explosive speciation in cichlid fishes of the African Great Lakes: A dynamic model of adaptive radiation. J. Fish Biol., 53, 1998, 18 – 36. Sturmbauer, C., Meyer, A.: Genetic divergence, speciation and morphological stasis in a lineage of African cichlid fishes. Nature, 358, 1992, 578 – 581. Sturmbauer, C. et al.: Lake level fluctuation synchronize genetic divergences of cichlid fishes in African lakes. Mol. Biol. Evol., 18, 2001, 144 – 154.
S použitím uvedenej literatúry spracoval: Róbert Toman
With the use of the provided literature, processed by: Róbert Toman.
Unter Verwendung der angegebenen Literatur verarbeitet von: Róbert Toman.
Kwa kutumia marejeo yaliyotolewa, iliyosindikwa na: Róbert Toman.
Ryby sa rozmnožujú iba pohlavne. Podľa spôsobu rozmnožovanie rozlišujeme na ikernačky a živorodky. Ikernačky kladú ikry – vajíčka podobne ako plazy, ktoré sa po akte rozmnožovania vyvíjajú mimo tela matky – oviparia – vajcorodosť. Ich priemer je od 0.8 mm do 6 mm, v závislosti na konkrétnom druhu. Ikry, napokon v menšej miere aj plôdik veľmi často neznášajú svetlo, preto sa ikry často zakrývajú – rozumej celé akvárium. Je to logické – treba si uvedomiť, že v prírode je obyčajne väčšia “tma” a ikry obyčajne kladú pod list, do rastlín, na dno, do jaskyniek pod skalný strop apod. Ikry, ktoré nie sú oplodnené, časom zbelejú, a je ich treba z akvária vybrať, pretože by sa zbytočne rozkladali a tým ohrozovali zvyšné. Naopak druhom živorodým sa ikry vyvíjajú v telovej dutine matky podobne ako u cicavcov – viviparia – živorodosť. V prípade málo častého vylučovania oplodnených ikier hovoríme o ovoviviparii – vajcoživorodosti. Plôdik totiž často opúšťa telo matky tesne po zbavení sa posledných zárodočných obalov. Práve vyliahnuté mláďa sa nazýva eleuterembryo. Živorodým druhov sa vlastne ikry vyvíjajú v tele, sú rovnakého tvaru, veľkosti ako u ikernačiek, len vývin prebieha dlhšie 20 – 40 dní. Živorodky majú vyvinutý špecifický orgán – gonopódium, u rodu Hemirhaphodon androgónium, pomocou ktorého sa rozmnožujú. Tvar gonopódia je určovacím druhovým znakom. Plodnosť rýb viac-menej rastie s ich dĺžkou, váhou. Vplyv naň však má aj okrem iného aj vek, obsah solí, kyslíka, teplota vody. Živorodým druhom, okrem gudeovitých spermie v tele samičky prežívajú aj mesiace – samček oplodní samičku a tento prenos genetickej informácie je životaschopný dlhé časové obdobie, obyčajne 3 – 4 vrhy, bol však zaznamenaný aj prípad 11 vrhov. Je zaujímavé, že aj medzi rybami sa nájdu druhy, ktoré sú obojpohlavné – hermafroditizmom, no drvivá väčšina rýb sú gonochoristi – funkčne samičky tvoria samičie pohlavné bunky, samce samčie pohlavné bunky. Pri rozmnožovaní by sme sa mali vyhnúť príbuzenskej plemenitbe. Ak už sme nútení ku nej, množme radšej rodiča s potomkom, ako sestra s bratom. Dlhodobá príbuzenská plemenitba vedie ku degeneratívnym poruchám, napr. ku zakriveniu chrbtice, ku iným morfologickým odchýlkam, ku zníženej životaschopnosti.
V prírode dochádza aj ku kríženiu medzi príbuznými, no ide o izolované oblasti, kde je zamedzený prístup ku migrácii a tým ku premiešavaniu genetickej informácie. Nie je vylúčené, že dochádza priamo ku kríženiu medzi potomkami jedného rodiča, ale vzhľadom na veľkosť areálu a početnosť populácie ide o rozmnožovanie medzi bratrancami a sesternicami. Keďže dochádza v oveľa vyššej miere aj ku prírodnému výberu, neraz sa stane, že takáto izolovaná príbuzensky sa množiaca populácia je životaschopnejšia ako populácia, ktorej areál nedovoľuje prakticky príbuzenské kríženie vďaka dostatku priestoru. Tento stav však platí, ak sú podmienky ideálne, len čo sa rapídne zmenia faktory prostredia negatívne, neizolovaná populácia je razom vo výhode. Aktivity vedúce k reprodukcii sú jedny z najkrajších, ktoré nám vedia ryby pri ich chovaní poskytnúť. Snaha samcov, predvádzanie sa pred samičkami je veľmi zaujímavá. Niektoré sú schopné prenasledovať samičky väčšinu dňa, iné sa tejto činnosti venujú len v určitom období a za určitých podmienok. Práve preto je vhodné práve počas snahy o rozmnožovanie viac dbať o tesnosť krycieho skla, pretože najmä samičky majú neraz snahu ujsť pred dobiedzajúcimi samcami aj skokmi nad hladinu.
Tetrám sa často pre ich záujem o ikry, kladie ako prekážka, z nášho chovateľského pohľadu rošt – filter, ktorý oddeľuje ikry od ostatných rýb. Netýka sa to však iba tetier, pre tetry je však použitie trecieho roštu príznačné. Rošt môže byť položený na holom dne po celom obsahu. Počas trenia padajú ikry na dno, kde sa nachádza rošt, ktorý je trochu nadvihnutý nad dno, aby na ikry rodičia nedosiahli. Samozrejme rošt môže byť položený aj inak, podstatné je aby sa dospelé ryby ku ikrám nedostali, alebo mali túto úlohu sťaženú. Materiál, z ktorého je vyrobený, je takisto rôzny, závisí od veľkosti rýb, ikier pre ktorý má byť použitý. Používajú sa rôzne najčastejšie pletivá pre záhradkárov apod. Existuje aj forma skleneného perforovaného roštu.
Pôrodnička je nádoba, uzavretý priestor, prípadne akvárium, v ktorom sa rodí poter. Opomeniem teraz nádrž, ako materiál sa komerčne používa umelá hmota. Tieto sú vhodné pre živorodky. Sú konštruované tak, aby napr. gravidná gupka mohla v nej porodiť svoje mladé. Existujú principiálne dva typy: pri prvom narodené rybky opúšťajú telo matky a prepadávajú cez lišty do spodnej časti pôrodničky, kam sa samička nemá šancu dostať, alebo pri druhom rybky opúšťajú matku do voľnej vody – v tomto prípade musí byť samozrejme toto akvárium bez rýb, inak čerstvo narodené rybky čoskoro požerie. Oba typy pôrodničiek na vode plávu – pohybujú sa na hladine Ako lepšia alternatíva použitého materiálu ku takýmto pôrodničkám je použitie sieťoviny, podobne ako pri trecom rošte. Pletivo stačí zošiť napr. saturnou to želaného tvaru a zabezpečiť napr. polystyrénom, aby pletivo nepadlo na dno. Výhoda takéhoto riešenia je zjavná – pletivo môže byť oveľa väčšie ako v obchode zakúpenej pôrodničke, a celkovo je šité takpovediac na mieru. Zakúpené pôrodničky z obchodu som však malými vrtákmi prevŕtal, aby medzery pre únik plôdika boli ešte širšie. O svojpomocne vytvorených pôrodničkách píše Ivan Vyslúžil v tomto článku.
Ako substrát pre niektoré druhy poslúžia jemnolisté rastliny, steny nádrže, listy rastlín, kamene na plochu, alebo strop kamenných “jaskyniek”, atď. Pre niektoré druhy rýb sa pripravujú rôzne výluhy. Néonka čierna – Hypessobrycon herbertaxelrodi je toho názorným príkladom – pre tento druh sa často výluhy pripravujú ako napokon aj pre ostatné tetrovité.
Rozmnožovanie cichlíd je zrejme jedno z najzaujímavejších medzi rybami. Napr. samička ostriežika purpurového si vyhliadne vhodnú jaskynku, napr. kokosový orech, kde dokáže držať v papuli svoje mladé celé hodiny. Samozrejme predtým prebehlo trenie. Najmä u amerických druhov sa páry musia nájsť samé, často vydržia spolu aj celý život. Niektoré druhy kladú ikry na substrát, napr. na plochý kameň, na podnebie kameňa apod. Zospodu kladie ikry napr. princezná – Neolamprologus brichardi. Tento druh je pomerne neznášanlivý voči sebe, takže dominantné páry eliminujú svoju konkurenciu, a potom sa plnou silou pustia do rozmnožovania. Keď začnú, často v pomerne pravidelných intervaloch prinášajú nové generácie. Ich ikry sú slabo ružové, pomerne veľké, počet ikier je 20 – 100. Veľa druhov cichlíd patria medzi tzv. papuľovce (česky tlamovce). Čiže sú to také druhy, ktoré svoje potomstvo uchovávajú vo svojej papuľke, avšak papuľovce nájdeme aj medzi inými taxónmi, napr. aj medzi druhmi rodu Betta. Ich rodičovský inštinkt je však často dosť slabý, je to samozrejme druhovo špecifické, napr. Neolamprologus brichardi, väčšina amerických cichlíd svoje potomstvo urputne bráni, na rozdiel od napr. malawijských rodov Pseudotropheus, Maylandia, Melanochromis, Labidochromis. Ikry držia poctivo v papuli, nechajú ich stráviť žĺtkový vak, pripravia ich na opustenie ústnej dutiny matky, vypustia ich. Niekedy sa stane, že ich ešte nejaký čas opäť pozbierajú a tento jav sa môže opakovať, no keď už tak nespravia, ich rodičovský inštinkt ide veľmi rýchlo bokom. Samec, v podstate po oplodnení iba chránil samičku, ale teraz svoje mladé väčšinou pokladá za votrelcov, prípadne za spestrenie menu. Samička je na tom podobne, ona sa ale skôr “pomýli”. Najprv si mladé nevšíma, akoby sa dištancovala, no časom sa môže stať, že svoje potomstvo začne prenasledovať.
Typické kaprozúbky (halančíky) nakladú ikry, ktoré v prírode jednoducho neskôr vyschnú. Impulz na vývoj zárodku donesie so sebou až opätovný dážď na začiatku obdobia dažďov. Simulácia tohto procesu je aj základom úspechu pri ich rozmnožovaní v zajatí, v našich nádržiach. Čiže po trení v akváriu je nutné ikry vybrať a umiestniť na suchom mieste. Po druhovo špecifickom čase ikry vyberieme, umiestnime do vhodnej nádrže a zalejeme vodou. Vtedy začne pokračovať reprodukcia až po vyliahnutie mladých rýb. Tieto ryby rastú veľmi rýchlo, pretože jednoročné druhy musia počas krátkej dobe dospieť a sami sa rozmnožovať.
Samičky panciernika Corydoras aeneus zbiera oplodnené ikry a dočasne ich nesie pod prsnými plutvami, ktoré má zložené do tzv. taštičky. Neskôr ich lepí na sklo a na rastliny. Pancierniky sa rozmnožujú v hejnách, patria sem druhy obľubujúce nižšiu teplotu. Známa je pomôcka ku stimulácii – nitenky a každodenné znižovanie hladiny vody a výmena vody za čerstvú studenú vodu, čo simuluje nadchádzajúce obdobie dažďov – obdobie hojnosti. Pancierniky si zväčša vlastné ikry veľmi nevšímajú, odporúča sa však, ich premiestňovať. Samozrejme veľa druhov nie je tak ľahko rozmnožiteľných: Corydoras sterbai, C. panda atď.
Najčastejšie sa v akváriách vyskytujúci prísavník Ancistrus cf. cirrhosus sa rozmnožuje v dutinách, alebo pod kamene. Chovatelia si pomáhajú napr. sklenenou fľašou, novodurovou trubkou apod. Samček si svoju samičku zvyčajne vyberie. Svoje ikry samec do istého času stráži, avšak nemá toľko prostriedkov ako veľké dravé druhy, ani nie je tak húževnatý. Avšak v bežnom spoločenskom akváriu má prísavník šancu sa rozmnožiť a poskytnúť aj potomstvo.
O skalároch – Pterophyllum scalaresa vraví, že vyžadujú tlak vody – vysoký vodný stĺpec. Avšak mal som možnosť vidieť ich odchovávať aj vo veľmi malých nádržiach nie vyšších ako 25 cm. Keďže v domovine sa vytierajú zvyčajne na listy vysoko rastúcich rastlín, môžeme im poskytnúť ako trecí substrát napr. otvorený kus z PET fľaše. Skalár, pokiaľ nakládol ikry, tak ich chráni, aj sa o ne stará, hneď ako sa rozplavávajú mladé, začne ich zvyčajne nemilosrdne požierať. V prírode by sa takto nesprával a stáva sa, že aj v akváriu mladé nepožiera.
Živorodky sú z hľadiska rozmnožovania vhodné pre začiatočníka. Dá sa pre ne pri rozmnožovaní uplatniť vyššie spomínaná pôrodnička, ale aj vlastnými prostriedkami zošité sito. Rozmnožujú sa pri troche snahy veľmi ochotne. Mečovka mexická je takmer vždy voči svojim mladým kanibal, platy sú na tom obdobne, len pávie očká zväčša vlastné potomstvo ušetria. Keď dospejú a začnú sa rozmnožovať, cyklus pôrodov sa opakuje zhruba po 4 – 5 týždňoch ako u väčšiny živorodiek. Gupky a platy môžu mať až 100 mladých, dospelá mečúnka aj 200. Ide o živorodé druhy, takže rodia živé mláďatá, v brušnej časti sa nachádza škvrna plodnosti, ktorá svedčí o pohlavnej zrelosti samičiek. Jedno oplodnenie samcom môže vystačiť aj na 3 – 4 vrhy. Počas dní pred pôrodom sa škvrna zväčšuje a tmavne. Blackmolly – tmavá vypestovaná forma Poecilia shenops je trochu ťažšie odchovateľná rybka, pretože vyžaduje o niečo teplejšiu vodu a nevidno na nej škvrnu plodnosti. U blacmoll pri ich potomstve máme možnosť vidieť presadzovanie sa génov prírodnej povahy, pretože nie všetky mladé budú celé čierne ako pravdepodobne sú rodičia. Ide o to, že blacmolla je vyšľachtená forma, ktorá nie je celkom biologicky ustálená. Dokonca sa môže stať, že niektoré jedince sú v mladšom veku strakaté a neskôr im čierny pigment pribúda natoľko, že celkom zčernejú. Aj pre blackmolly je vhodné sito na ich rozmnožovanie, resp. na ochranu vyliahnutého potomstva pred pažravosťou dospelcov.
Labyrintky žijú obyčajne v preteplených oblastiach, kde sa nachádza veľmi veľa súčastí vo vode: rýb, rastlín, organických zvyškov, driev apod. Dospelé jedince dýchajú atmosférický kyslík. Veľa druhov labyrintiek tvorí penové hniezdo – pri ochrane ikier využijú svoju schopnosť naberať atmosférický vzduch. Penové hniezdo je tvorené čiastočkami vzduchu, ktoré ryby premelú v ústnej dutine. Na vode pláva. To znamená, že hniezdo pre ikry pláva na hladine, nie je vhodné aby v akváriu bolo silné prúdenie vody – to by mohlo poškodiť stavbu penového hniezda. Ako podpora preň slúžia napr. plávajúce rastliny Riccia, Salvinia, Myriophyllum, Lemna apod. Hniezdo obyčajne stavia samec, niektoré druhy alebo jedince je treba po trení z nádrže odloviť, iné nie. Týmto spôsobom sa rozmnožujú guramy, bojovnice, kolizy. O kolizách – Colisa je známe, že ich poter je jeden z najmenších, preto sa odporúča udržiavať hladinu vody počas jeho vývoja pod 10 cm. Sú veľmi náchylné na zmenu teploty a na chlad, preto je vhodné zabezpečiť výborné utesnenie krycím sklom alebo niečím iným, a udržiavanie rovnakej teploty vody, a vzduchu nad hladinou ak medzi krycím sklom a hladinou je nejaký priestor. Filtrovanie by malo byť veľmi slabé alebo žiadne a prúdenie vody minimálne, alebo žiadne. Kritické obdobie je doba tvorby labyrintu. Dochádza k tomu po 50 dni a toto obdobie je kritické, vtedy je vhodné ešte viac zvýšiť obozretnosť, aby sme prípadné straty minimalizovali. Pred rozmnožovaním bojovníc Betta splendens môže v ich správaní dôjsť ku prejavu džentlmenstva. Vtedy sok pri fyziologickej potrebe soka nadýchnuť sa, čaká na to aby mohol pokračovať v súboji. Spoločenské boje samcov sú u bojovní dosť drsné.
Vodné rastliny sa rozmnožujú v akváriách, ale často aj v prírode, hlavne nepohlavne. Vegetatívne rozmnožovanie nastáva rôznymi spôsobmi, napr. odrezkami, poplazmi, odnožami atď. Pohlavný spôsob nie je taký častý ako u ich suchozemských príbuzných. Rastliny často v akváriu nekvitnú a k opeleniu – k začiatku úspešného rozmnoženia dochádza ešte menej často, čo je pochopiteľné aj vzhľadom na priestorové bariéry.
Fish reproduce exclusively through sexual means. According to the method of reproduction, we distinguish between egg-layers and livebearers. Egg-layers deposit eggs (roe) similar to reptiles, which develop outside the mother’s body after the act of reproduction – oviparous reproduction. Their diameter ranges from 0.8 mm to 6 mm, depending on the species. Eggs, and to a lesser extent, fry, often dislike light, so the eggs are frequently covered – meaning the entire aquarium. This is logical – one must realize that in nature, there is usually more “darkness,” and eggs are typically laid under leaves, among plants, on the bottom, in crevices under rocky ceilings, etc. Unfertilized eggs turn white over time, and they should be removed from the aquarium because they would otherwise decompose unnecessarily, posing a threat to the others.
On the contrary, in livebearing species, eggs develop in the body cavity of the mother, similar to mammals – viviparous reproduction. In cases of rare expulsion of fertilized eggs, we refer to it as ovoviviparity – egg livebearing. The fry often leaves the mother’s body shortly after shedding the last embryonic membranes. The just-hatched offspring is called an eleutherembryo. In livebearing species, eggs essentially develop inside the body, having the same shape and size as those of egg-laying species, but the development takes longer, around 20 – 40 days. Livebearers have a specialized organ called a gonopodium, in the case of the genus Hemirhaphodon androgynous, which they use for reproduction. The shape of the gonopodium is a species-specific characteristic.
The fertility of fish more or less increases with their length and weight. Besides, factors like age, salt content, oxygen, and water temperature also influence it. In livebearing species, male sperm can survive in the female’s body for months – the male fertilizes the female, and this transfer of genetic information remains viable for a long period, usually spanning 3 – 4 broods, but cases of 11 broods have been recorded. Interestingly, among fish, there are also hermaphroditic species – capable of both male and female reproduction. However, the vast majority of fish are gonochoristic – functionally females produce female gametes, and males produce male gametes. When breeding, one should avoid inbreeding. If forced into it, it is better to mate a parent with offspring rather than sister with brother. Long-term inbreeding leads to degenerative disorders, such as spinal curvature, other morphological deviations, and reduced viability.
In nature, there is also mating between relatives, but it occurs in isolated areas where access to migration and thus the mixing of genetic information is restricted. It is not excluded that direct mating occurs between the offspring of a single parent, but due to the size of the area and the population’s size, it involves mating between cousins. Since there is much higher natural selection in such cases, it often happens that a population reproducing in such a related manner is more viable than a population whose area practically prohibits inbreeding due to sufficient space. However, this condition holds true only when the conditions are ideal; once environmental factors change rapidly and negatively, the non-isolated population suddenly gains an advantage. Activities leading to reproduction are among the most beautiful aspects that fish can provide when kept. The efforts of males, showcasing themselves to females, are very intriguing. Some are capable of pursuing females for most of the day, while others engage in this activity only during specific periods and under certain conditions. That’s why it’s advisable to ensure tight cover glasses, especially during reproduction attempts, as females, in particular, often try to escape from pursuing males, even jumping above the water surface.**
Tetras often lay their eggs, a behavior we view as a challenge from a breeding perspective. For tetras, the use of a spawning grid or filter is typical. The grid can be placed on the bare bottom throughout the tank. During spawning, the eggs fall to the bottom, where the grid is positioned slightly above to prevent the parents from reaching the eggs. Of course, the grid can be placed differently, but the key is to prevent adult fish from reaching the eggs or to make it more difficult for them. The material used for the grid varies, depending on the size of the fish and the eggs it is intended for. Commonly used materials include various types of mesh used in gardening and similar activities. There is also a form of perforated glass grid available.
A breeding box is a container, enclosed space, or aquarium where fry are born. I’ll skip the tank, as commercially, synthetic materials are used. These are suitable for livebearers. They are designed so that, for example, a gravid guppy can give birth to its young inside. There are fundamentally two types: in the first, the newborn fish leave the mother’s body and fall through slots to the bottom of the breeding box, where the female cannot reach them. In the second, the fish leave the mother into free water – in this case, of course, this aquarium must be without other fish, as newly born fish would soon be eaten. Both types of breeding boxes float on the water – they move on the surface. A better alternative to the material used for such breeding boxes is the use of a net, similar to a spawning grid. The net can be stitched, for example, into the desired shape using a nylon thread, and secured, for example, with polystyrene to prevent it from sinking to the bottom. The advantage of this solution is evident – the net can be much larger than that of a store-bought breeding box, and overall, it can be tailor-made. However, I have drilled small holes in store-bought breeding boxes to widen the gaps for fry escape. Ivan Vyslúžil discusses self-made breeding boxes in this article.
Fine-leaved plants, tank walls, plant leaves, stones on the surface, or the ceilings of stone “caves,” etc., can serve as substrate for certain species. Various infusions are prepared for some fish species. The Black Neon Tetra (Hypessobrycon herbertaxelrodi) is a notable example – infusions are often prepared for this species, as well as for other tetras.
The reproduction of cichlids is arguably one of the most intriguing aspects among fish. For instance, a female Purple Spotted Gudgeon selects a suitable cave, such as a coconut shell, where she can hold her offspring (fry) for several hours. Of course, spawning has occurred before. Especially among American cichlid species, pairs must find each other and often remain together for their entire lives. Some species lay eggs on a substrate, such as a flat stone or the roof of a stone, etc. Princess cichlids, like Neolamprologus brichardi, lay eggs underneath a stone. This species is quite intolerant of each other, so dominant pairs eliminate their competition and then fully engage in reproduction. Once they start, they often bring new generations at fairly regular intervals. Their eggs are weakly pink, relatively large, with a quantity ranging from 20 to 100. Many cichlid species belong to the so-called mouthbrooders. These are species that keep their offspring in their buccal cavity (mouth), and mouthbrooders can also be found among other taxa, such as species of the Betta genus. However, their parental instinct is often quite weak; it is, of course, species-specific. For example, Neolamprologus brichardi and most American cichlids fiercely defend their offspring, unlike Malawian genera like Pseudotropheus, Maylandia, Melanochromis, Labidochromis. They diligently keep the eggs in the buccal cavity, let them absorb the yolk sac, prepare them for leaving the maternal oral cavity, and release them. Sometimes it happens that they collect them again for some time, and this phenomenon can be repeated, but when they stop doing so, their parental instinct quickly diminishes. The male, essentially protecting the female after fertilization, now often considers the offspring as intruders or a disturbance to the menu. The female is similar, but she might make a “mistake” at first. Initially, she ignores the fry, as if keeping her distance, but over time, she may start chasing her offspring.
Typical catfish, such as Corydoras, lay eggs that simply dry up in nature, awaiting the impulse for embryo development brought by rain during the rainy season. Simulating this process is the foundation for successful reproduction in captivity, in our tanks. After spawning in the aquarium, it is necessary to collect the eggs and place them in a dry location. After a species-specific period, the eggs are picked up, placed in a suitable tank, and covered with water. Reproduction continues until the young fish hatch. These fish grow rapidly because one-year species must mature quickly to reproduce on their own.
Female Corydoras catfish, like Corydoras aeneus, gather fertilized eggs and temporarily carry them under their pectoral fins, which are folded into a so-called pocket. Later, they stick them to the glass and plants. Corydoras catfish reproduce in schools and prefer lower temperatures. A known method for stimulation involves using threads and daily lowering the water level while exchanging it for fresh, cold water, simulating an upcoming period of abundance and rain. Corydoras catfish usually pay little attention to their own eggs, but it is recommended to move them. However, many species are not as easily reproducible, such as Corydoras sterbai, C. panda, etc.
The most commonly occurring sucker fish in aquariums, Ancistrus cf. cirrhosus, reproduces in cavities or under stones. Breeders use aids such as glass bottles, PVC pipes, etc. The male typically chooses his female. The male guards the eggs for a certain period, but he doesn’t have as many defenses as larger predatory species, nor is he as tenacious. However, in a typical community tank, the sucker fish has a chance to reproduce and provide offspring.
About Angelfish – Pterophyllum scalare, it is often said that they require water pressure – a high water column. However, I have had the opportunity to see them breeding in very small tanks, no higher than 25 cm. Since in their native habitat they usually spawn on the leaves of tall plants, we can provide them with an open piece of a PET bottle as a spawning substrate. When the angelfish lay eggs, the guarding and care for them is usually done by the parent, but as soon as the fry start swimming freely, the adult angelfish often mercilessly devours them. This behavior is not typical of their natural habitat, and sometimes, in an aquarium, the adults may not consume the fry.
Livebearers are suitable for beginners in terms of reproduction. A previously mentioned breeding box can be used for them, or a homemade sieve can also be effective. They reproduce very willingly with a bit of effort. The Mexican swordtail is almost always a cannibal toward its young, and platies exhibit similar behavior, although sailfin mollies usually spare their own offspring. When they mature and begin reproducing, the birthing cycle repeats roughly every 4 – 5 weeks, as is typical for most livebearers. Guppies and platies can have up to 100 offspring, while an adult swordtail can have up to 200. Since they are livebearing species, giving birth to live young, there is a fertility spot in the abdominal region indicating the sexual maturity of the females. One mating by the male may be sufficient for 3 – 4 broods. In the days leading up to birth, the spot enlarges and darkens. Black Molly – a dark cultivated form of Poecilia shenops, is a bit more challenging to breed because it requires slightly warmer water and the fertility spot is not visible. With Black Molly’s offspring, we have the opportunity to observe the manifestation of genes in their natural state, as not all young fish will be entirely black, unlike their presumably all-black parents. This is because Black Molly is a cultivated form that is not entirely biologically stable. It may even happen that some individuals have speckles when young, and later the black pigment increases to the point that they become entirely black. A breeding box or a sieve is also suitable for Black Molly’s reproduction, providing protection for the hatched fry against the adults’ voraciousness.
Labyrinth fish usually inhabit warm areas where there is a lot of variety in the water, including fish, plants, organic debris, wood, etc. Adult individuals breathe atmospheric oxygen. Many labyrinth fish species build bubble nests – they utilize their ability to take in atmospheric air for protecting their eggs. The bubble nest is formed by air particles that the fish mashes in its mouth. It floats on the water surface, meaning that it’s not suitable to have strong water flow in the aquarium, as it could damage the structure of the bubble nest. Floating plants like Riccia, Salvinia, Myriophyllum, Lemna, etc., serve as support for the nest. Typically, the male builds the nest, but in some species or individuals, it may not be necessary to remove them from the tank after spawning. This breeding method is common among gouramis, bettas, and Colisa species. Regarding Colisa – Colisa is known for having one of the smallest fry, so it is recommended to keep the water level during their development below 10 cm. They are very sensitive to temperature changes and cold, so it is advisable to ensure a well-sealed lid or something similar, maintaining a constant water temperature and air space above the water surface. Filtration should be very weak or none, and water flow minimal or none. The critical period is during labyrinth formation, which occurs around 50 days, and extra caution is recommended during this time to minimize potential losses. Before Betta splendens breeding, males may exhibit gentlemanly behavior, where they pause in physiological need to breathe air, waiting to resume the fight. Male-male confrontations in Betta can be quite intense.
Aquatic plants reproduce in aquariums and often in nature, mainly asexually. Vegetative reproduction occurs through various methods, such as cuttings, runners, offsets, etc. Sexual reproduction is not as common as in their terrestrial relatives. In aquariums, plants often do not bloom, and pollination, the beginning of successful reproduction, occurs even less frequently due to spatial barriers.
Fische vermehren sich ausschließlich sexuell. Je nach Fortpflanzungsmethode unterscheiden wir zwischen Eiablegern und Lebendgebärenden. Eiableger legen Eier ähnlich wie Reptilien, die sich nach der Fortpflanzung außerhalb des Mutterkörpers entwickeln – Oviparia – Eiablage. Ihr Durchmesser variiert je nach Art von 0,8 mm bis 6 mm. Eier und auch Jungfische vertragen oft kein Licht, daher werden die Eier oft versteckt, beispielsweise das gesamte Aquarium abgedeckt. Das ist logisch – es muss beachtet werden, dass in der Natur oft mehr “Dunkelheit” herrscht, und die Eier werden normalerweise unter Blättern, in Pflanzen, auf dem Boden, in Höhlen unter Felsendecken usw. abgelegt. Nicht befruchtete Eier bleichen im Laufe der Zeit aus und sollten aus dem Aquarium entfernt werden, da sie sich unnötig zersetzen und die anderen gefährden würden. Bei Lebendgebärenden entwickeln sich die Eier in der Körperhöhle der Mutter ähnlich wie bei Säugetieren – Viviparia – Lebendgebärend. Bei seltenem Legen von befruchteten Eiern sprechen wir von Ovoviviparie – Ei-lebendgebärend. Der Nachwuchs verlässt das Muttertier oft kurz nach dem Verlust der letzten embryonalen Hüllen. Das gerade geschlüpfte Jungtier wird Eleuterembryo genannt. Bei Lebendgebärenden entwickeln sich die Eier tatsächlich im Körper und haben die gleiche Form und Größe wie bei Eiablegern, nur der Entwicklungsprozess dauert länger, etwa 20 – 40 Tage. Lebendgebärende haben ein spezialisiertes Organ – das Gonopodium, bei der Gattung Hemirhaphodon androgynum, mit dem sie sich vermehren. Die Form des Gonopodiums ist ein artspezifisches Merkmal. Die Fruchtbarkeit von Fischen steigt mehr oder weniger mit ihrer Länge und ihrem Gewicht. Der Einfluss von Faktoren wie Alter, Salzgehalt, Sauerstoff und Wassertemperatur auf die Fruchtbarkeit ist jedoch ebenfalls vorhanden. Bei Lebendgebärenden überleben die Spermien im Körper des Weibchens oft Monate – das Männchen befruchtet das Weibchen, und dieser Transfer genetischer Informationen bleibt lange lebensfähig, normalerweise für 3 – 4 Würfe, es wurde jedoch auch ein Fall von 11 Würfen dokumentiert. Es ist interessant festzustellen, dass es auch unter Fischen hermaphroditische Arten gibt, aber die überwältigende Mehrheit der Fische ist gonochoristisch – funktionell bilden Weibchen weibliche Geschlechtszellen, Männchen männliche Geschlechtszellen. Bei der Fortpflanzung sollten wir Inzest vermeiden. Wenn wir dazu gezwungen sind, sollten wir eher Eltern mit Nachkommen als Geschwister miteinander paaren. Längerfristige Inzucht führt zu degenerativen Störungen, z. B. zur Krümmung der Wirbelsäule, zu anderen morphologischen Abweichungen, zur verringerten Lebensfähigkeit.
In der Natur kommt es auch zu Kreuzungen zwischen Verwandten, aber dies geschieht in isolierten Gebieten, in denen der Zugang zur Migration und damit zum Austausch genetischer Informationen eingeschränkt ist. Es ist nicht ausgeschlossen, dass es direkt zu Kreuzungen zwischen den Nachkommen eines Elternteils kommt, aber aufgrund der Größe des Gebiets und der Bevölkerung kann es zu Paarungen zwischen Cousins kommen. Da in solchen Fällen eine höhere natürliche Auslese stattfindet, kommt es oft vor, dass eine Bevölkerung, die auf verwandte Weise reproduziert, lebensfähiger ist als eine Population, bei der Inzucht aufgrund ausreichenden Raums praktisch verhindert wird. Diese Bedingung gilt jedoch nur, wenn die Bedingungen ideal sind; sobald sich Umweltfaktoren schnell und negativ ändern, hat die nicht isolierte Bevölkerung plötzlich einen Vorteil. Aktivitäten, die zur Fortpflanzung führen, gehören zu den schönsten Aspekten, die Fische bieten können, wenn sie gehalten werden. Die Bemühungen der Männchen, sich den Weibchen zu präsentieren, sind sehr faszinierend. Einige sind in der Lage, die Weibchen den größten Teil des Tages zu verfolgen, während andere diese Aktivität nur zu bestimmten Zeiten und unter bestimmten Bedingungen ausüben. Daher ist es ratsam, insbesondere während der Fortpflanzungsversuche, für dichte Abdeckgläser zu sorgen, da insbesondere die Weibchen oft versuchen, den verfolgenden Männchen zu entkommen, sogar über die Wasseroberfläche springend.
Tetras legen oft Wert auf Laichen und stellen dies aus unserer züchterischen Sicht als Hindernis dar, das ist das Netz – der Filter, der die Eier von anderen Fischen trennt. Dies betrifft jedoch nicht nur Tetras, sondern die Verwendung eines Laichgitters ist für Tetras charakteristisch. Das Gitter kann über dem blanken Boden im gesamten Tank platziert werden. Während des Laichens fallen die Eier auf den Boden, wo sich das Gitter befindet, das leicht über dem Boden angehoben ist, damit die Eltern die Eier nicht erreichen können. Natürlich kann das Gitter auch anders platziert werden, es ist wichtig, dass die erwachsenen Fische die Eier nicht erreichen können oder dass ihnen diese Aufgabe erschwert wird. Das Material, aus dem es hergestellt ist, ist ebenfalls unterschiedlich und hängt von der Größe der Fische und den für die Eier verwendeten ab. Verschiedene Arten von Drahtgeflecht, die häufig für Gärtner usw. verwendet werden, werden verwendet. Es gibt auch eine Form eines perforierten gläsernen Gitters.
Eine Kinderstube ist ein Gefäß, ein geschlossener Raum oder ein Aquarium, in dem der Nachwuchs geboren wird. Ich lasse jetzt das Becken als Material aus, es wird kommerziell verwendetes Kunststoffmaterial verwendet. Diese sind für Lebendgebärende geeignet. Sie sind so konzipiert, dass beispielsweise ein tragendes Guppy in der Lage ist, darin seine Jungen zu gebären. Es gibt grundsätzlich zwei Arten: Bei der ersten Art verlassen die geborenen Fische den Körper der Mutter und fallen über Leisten in den unteren Teil der Kinderstube, wohin die Mutter nicht gelangen kann. Bei der zweiten Art verlassen die Fische die Mutter in freies Wasser – in diesem Fall muss das Aquarium natürlich fischfrei sein, sonst werden die frisch geborenen Fische bald gefressen. Beide Arten von Kinderstuben schwimmen auf dem Wasser – sie bewegen sich auf der Oberfläche. Als bessere Alternative zum verwendeten Material für solche Kinderstuben wird ein Netz verwendet, ähnlich wie bei einem Laichgitter. Das Netz kann beispielsweise mit einem Satinstich in die gewünschte Form genäht und mit Polystyrol befestigt werden, damit das Netz nicht auf den Boden fällt. Der Vorteil dieser Lösung ist offensichtlich – das Netz kann viel größer sein als bei einem im Laden gekauften Laichgitter, und insgesamt ist es sozusagen maßgeschneidert. Gekaufte Kinderstuben aus dem Laden habe ich jedoch mit kleinen Bohrern durchbohrt, um die Lücken für den Austritt der Jungen breiter zu machen. Über selbstgemachte Kinderstuben schreibt Ivan Vyslúžil in diesem Artikel.
Als Substrat für einige Arten dienen feinblättrige Pflanzen, Wände des Tanks, Blätter von Pflanzen, Steine auf der Oberfläche oder Dach von steinernen “Höhlen” usw. Für einige Fischarten werden verschiedene Auszüge vorbereitet. Der Schwarze Neon – Hypessobrycon herbertaxelrodi ist ein anschauliches Beispiel dafür – für diese Art werden oft Extrakte vorbereitet, wie schließlich auch für andere Tetras.
German: Die Fortpflanzung von Buntbarschen ist wahrscheinlich eine der interessantesten unter den Fischen. Zum Beispiel sucht sich das Weibchen des Purpurprachtbarschs eine geeignete Höhle aus, z. B. eine Kokosnuss, in der es seine Jungen stundenlang halten kann. Natürlich hat zuvor die Paarung stattgefunden. Insbesondere bei amerikanischen Arten müssen sich die Paare selbst finden und bleiben oft ein ganzes Leben lang zusammen. Einige Arten legen ihre Eier auf den Untergrund, zum Beispiel auf einen flachen Stein oder auf die Oberfläche eines Steins usw. Eine andere Art, die ihre Eier von unten legt, ist die Prinzessin – Neolamprologus brichardi. Diese Art ist ziemlich unverträglich, so dass dominante Paare ihre Konkurrenz ausschalten und dann mit voller Kraft mit der Fortpflanzung beginnen. Wenn sie anfangen, bringen sie oft in ziemlich regelmäßigen Abständen neue Generationen hervor. Ihre Eier sind schwach rosa, ziemlich groß, die Anzahl der Eier beträgt 20 – 100. Viele Arten von Buntbarschen gehören zu den sogenannten Maulbrütern. Das bedeutet, dass es Arten sind, die ihren Nachwuchs in ihrem Maul aufbewahren, aber Maulbrüter finden sich auch zwischen anderen Taxa, zum Beispiel auch bei Arten der Gattung Betta. Ihr elterlicher Instinkt ist jedoch oft ziemlich schwach, das ist natürlich artenspezifisch, zum Beispiel Neolamprologus brichardi, die meisten amerikanischen Buntbarsche verteidigen ihren Nachwuchs hartnäckig, im Gegensatz zu zum Beispiel malawischen Gattungen wie Pseudotropheus, Maylandia, Melanochromis, Labidochromis. Sie halten ihre Eier sorgfältig in ihrem Maul, lassen sie den Dotterbeutel verdauen, bereiten sie darauf vor, die Mundhöhle der Mutter zu verlassen, und setzen sie frei. Manchmal passiert es, dass sie die Jungen für eine Weile wieder aufnehmen, und dieses Phänomen kann sich wiederholen, aber wenn sie es einmal nicht tun, geht ihr elterlicher Instinkt sehr schnell verloren. Das Männchen schützte im Grunde genommen nach der Befruchtung nur das Weibchen, aber jetzt betrachtet es seine Jungen meistens als Eindringlinge oder als Bereicherung des Menüs. Das Weibchen ist ähnlich, sie “irrt” sich jedoch eher. Zuerst beachtet sie die Jungen nicht, als würde sie sich distanzieren, aber im Laufe der Zeit kann es passieren, dass sie ihren Nachwuchs zu verfolgen beginnt.
Typische Saugmaulwelse legen Eier, die in der Natur einfach austrocknen. Der Impuls zur Embryonalentwicklung wird durch erneuten Regen zu Beginn der Regenzeit gebracht. Die Simulation dieses Prozesses ist auch die Grundlage für den Erfolg bei ihrer Zucht in Gefangenschaft, in unseren Tanks. Nach der Paarung im Aquarium müssen die Eier ausgewählt und an einem trockenen Ort platziert werden. Nach einer artenspezifischen Zeit nehmen wir die Eier heraus, setzen sie in ein geeignetes Becken und gießen Wasser darüber. Dann beginnt die Fortpflanzung erst nach dem Schlüpfen der jungen Fische. Diese Fische wachsen sehr schnell, da einjährige Arten während einer kurzen Zeit erwachsen werden müssen und selbständig Nachwuchs zeugen müssen.
Weibliche Panzerwelse Corydoras aeneus sammeln befruchtete Eier und tragen sie vorübergehend unter den Brustflossen, die zu einer sogenannten Tasche zusammengesetzt sind. Später klebt sie sie an die Glasscheibe und die Pflanzen. Panzerwelse vermehren sich in Schwärmen, zu diesen Arten gehören Arten, die niedrigere Temperaturen bevorzugen. Ein bekannter Stimulationshilfsmittel sind Fadenschneider und tägliches Absenken des Wasserstandes und Austausch des Wassers gegen frisches kaltes Wasser, was die bevorstehende Regenzeit simuliert – die Zeit der Fülle. Panzerwelse nehmen ihre eigenen Eier meistens nicht viel wahr, es wird jedoch empfohlen, sie umzuplatzieren. Natürlich sind viele Arten nicht so leicht zu züchten: Corydoras sterbai, C. panda usw.
Der am häufigsten in Aquarien vorkommende Saugwels Ancistrus cf. cirrhosus züchtet in Höhlen oder unter Steinen. Züchter verwenden zum Beispiel eine Glasflasche, ein Acrylrohr usw. Das Männchen wählt normalerweise sein Weibchen aus. Das Männchen bewacht seine Eier für eine bestimmte Zeit, hat aber nicht so viele Mittel wie große räuberische Arten und ist auch nicht so zäh. Aber in einem normalen Gesellschaftsaquarium hat der Saugwels die Chance, sich zu vermehren und auch Nachwuchs zu liefern.
Über Skalare – Pterophyllum scalare wird gesagt, dass sie Druck im Wasser benötigen – einen hohen Wassersäulen. Ich hatte jedoch die Gelegenheit, sie auch in sehr kleinen Tanks von nicht mehr als 25 cm aufzuziehen. Da sie sich in ihrer Heimat normalerweise auf die Blätter hochwachsender Pflanzen legen, können wir ihnen als Laichsubstrat zum Beispiel einen offenen Schnitt aus einer PET-Flasche bieten. Der Skalar schützt und kümmert sich normalerweise um seinen Laich, aber sobald die Jungen schwimmen können, neigt er dazu, sie gnadenlos zu verschlingen. In der Natur würde er sich nicht so verhalten, und es kommt vor, dass er die Jungen auch im Aquarium nicht frisst.
Lebendgebärende Fische sind in Bezug auf die Zucht für Anfänger geeignet. Sie können für sie die oben genannte Zuchtkammer verwenden oder selbstgemachte Siebe verwenden. Sie vermehren sich mit etwas Anstrengung sehr willig. Das Schwertträger-Männchen ist fast immer kannibalisch gegenüber seinem Nachwuchs, Platys sind ähnlich, nur Paradiesfische schonen in der Regel ihre eigenen Nachkommen. Wenn sie ausgewachsen sind und zu züchten beginnen, wiederholt sich der Fortpflanzungszyklus ungefähr alle 4 – 5 Wochen wie bei den meisten Lebendgebärenden. Guppys und Platys können bis zu 100 Nachkommen haben, ein erwachsener Schwertträger bis zu 200. Es handelt sich um lebendgebärende Arten, dh sie gebären lebende Nachkommen, in der Bauchregion befindet sich ein Fleck der Fruchtbarkeit, der auf die geschlechtliche Reife der Weibchen hinweist. Eine Befruchtung durch das Männchen kann für 3 – 4 Würfe ausreichen. In den Tagen vor der Geburt vergrößert sich und verdunkelt sich der Fleck. Der Schwarze Molly – die dunkle gezüchtete Form Poecilia shenops – ist etwas schwieriger zu züchten, da er etwas wärmeres Wasser benötigt und der Fruchtbarkeitsfleck darauf nicht sichtbar ist. Bei der Zucht von Black Mollies haben wir die Möglichkeit, eine Durchsetzung der Gene der natürlichen Verhaltensweise zu sehen, da nicht alle Jungen vollständig schwarz sind, wie wahrscheinlich die Eltern sind. Es handelt sich um eine gezüchtete Form, die nicht vollständig biologisch stabilisiert ist. Es kann sogar passieren, dass einige Individuen in jungen Jahren gefleckt sind und später so viel schwarzen Pigment hinzukommt, dass sie vollständig schwarz werden. Auch für Black Mollies ist ein Sieb zur Zucht oder zum Schutz der geschlüpften Nachkommen vor der Gier der Erwachsenen geeignet.
Labyrinthische Fische leben normalerweise in überhitzten Gebieten, in denen es sehr viele Komponenten im Wasser gibt: Fische, Pflanzen, organische Rückstände, Holz usw. Erwachsene Individuen atmen atmosphärischen Sauerstoff. Viele Arten von Labyrinthischen Fischen bilden ein Schaumnest – sie nutzen ihre Fähigkeit, atmosphärische Luft aufzunehmen, zum Schutz ihrer Eier. Das Schaumnest besteht aus Luftpartikeln, die die Fische in ihrem Maul mahlen. Es schwimmt auf dem Wasser. Das bedeutet, dass das Nest für die Eier an der Oberfläche schwimmt, und es ist nicht ratsam, dass im Aquarium eine starke Wasserströmung vorhanden ist – dies könnte die Struktur des Schaumnestes beschädigen. Als Unterstützung können zum Beispiel schwebende Pflanzen wie Riccia, Salvinia, Myriophyllum, Lemna usw. dienen. Das Nest wird normalerweise vom Männchen gebaut, aber bei einigen Arten oder Individuen muss es nach der Paarung aus dem Tank genommen werden, bei anderen nicht. Auf diese Weise vermehren sich Guramis, Kampffische, Colisa. Über Colisas – Colisa ist dafür bekannt, dass ihr Nachwuchs einer der kleinsten ist, daher wird empfohlen, die Wasserhöhe während ihrer Entwicklung unter 10 cm zu halten. Sie sind sehr anfällig für Temperaturschwankungen und Kälte, daher ist es ratsam, eine ausgezeichnete Abdichtung mit einer Abdeckung oder etwas anderem sicherzustellen und die Wassertemperatur und die Luft über der Oberfläche beizubehalten, wenn zwischen der Abdeckung und der Oberfläche Platz ist. Das Filtern sollte sehr schwach oder nicht vorhanden sein und die Wasserströmung minimal oder nicht vorhanden. Die kritische Periode ist die Zeit der Labyrinthbildung. Dies geschieht nach 50 Tagen, und diese Zeit ist kritisch, es ist ratsam, in dieser Zeit noch aufmerksamer zu sein, um mögliche Verluste zu minimieren. Vor der Fortpflanzung von Kampffischen Betta splendens kann es zu einer Manifestation von Gentleman-Verhalten kommen. In diesem Fall atmet der Konkurrent, um physiologische Bedürfnisse zu befriedigen, tief ein und wartet darauf, dass er den Kampf fortsetzen kann. Kämpfe zwischen Männchen sind bei Kampffischen ziemlich rau.
Wasser Pflanzen vermehren sich in Aquarien, aber oft auch in der Natur, hauptsächlich ungeschlechtlich. Die vegetative Vermehrung erfolgt auf verschiedene Arten, z. B. durch Stecklinge, Ausläufer, Ableger usw. Sexuelle Fortpflanzung ist bei ihnen nicht so häufig wie bei ihren terrestrischen Verwandten. Pflanzen blühen oft nicht im Aquarium, und die erfolgreiche Bestäubung – der Beginn der erfolgreichen Fortpflanzung – erfolgt noch seltener, was angesichts der räumlichen Barrieren verständlich ist.
Každý asi pozná vetu: Zdravý ako ryba. Bodaj by vaše ryby boli zdravé, ale skúsenejší akvarista by sa asi tomuto porekadlu vyhol. Zárodky infekcií sa vo vode úspešne šíria a často aj neustále vyskytujú, avšak ryby samozrejme disponujú imunitným systémom, ktorý bráni prieniku choroby. Tento systém môže byť samozrejme rôznymi faktormi narušený, a tým sa budeme tu zaoberať. Chcel by som však znovu zdôrazniť, že ryby si za normálnych podmienok, ktoré by sme im mali vedieť poskytnúť, poradiť aj samé. Počas choroby ryba veľmi často v závislosti od druhu mení sfarbenie. Môže zblednúť, aj stmavnúť.
Ak sme dospeli do štádia, že sa nevyhneme dezifenkcii, vhodný je hypermangán, ocot, čistá voda, zmes soli a octu, podrobenie varu. Vyššia teplota znižuje v dlhšom časovom období kondíciu, imunitu rýb, aj keď sa v takejto vode na pohľad cítia lepšie a sú krajšie vyfarbené. Choroby rýb sú ťažšie diagnostifikovateľné a liečiteľné, najmä tie vnútorné. Vonkajšie ochorenia, ktoré sú častokrát badateľné aj voľným okom, aj keď aj medzi nimi sa nájde zopár, ktoré môžu aj napriek liečeniu kondične dobre disponovanej ryby viesť ku úhynu. Vnútorné ochorenia často zistíme prostredníctvom zmeny správania, prípadne až po úhyne. Špecializované veterinárne pracoviská sú schopné identifikovať aj z mŕtveho materiálu typ ochorenia. Pri použití liečiv je často vhodné z nádrže rastlinyodstrániť, ak je to možné. Pretože liečivá rastlinám vyslovene škodia, a ich účinky sú dlhodobé. Ak to nie je možné, po skončení liečby je vhodné použiť aktívne uhlie, ktoré teoreticky dokáže niečo z nenaviazaných súčastí liečiv a produktov reakcií nimi spôsobených, viazať. Po určitom čase je nutné samozrejme aj aktívne uhlie odobrať, pretože stratí absorpčné vlastnosti. Šírenie choroby môže byť plošné, ale často krát je viazané na jediného hostiteľa – čo nám dáva možnosť zbaviť sa choroby v jej počiatku premiestnením napadnutého jedinca do inej nádrže. Ak by sa takémuto parazitu podarilo úspešne zdolať svoju svoju obeť, táto už ďalej mu nebude poskytovať živiny, a prejde resp. bude si hľadať nového kandidáta. Možno ste si všimli niekedy, že nebadane vám po jednom odchádzajú ryby v pomerne dlhom časovom úseku – je to možný následok práve takéhoto priebehu choroby.
Ichtyoftirióza – je pomerne časté ochorenie rýb, slangovo sa mu hovorí krupička. Spôsobuje ho Ichthyophthirius multifilis, ktorý patrí medzi nálevníky. Ryby sú posiate akoby “krupičkou”. Choroba preniká do akvária živou potravou, cudzou vodou, prinesenými rybami. Proti krupičke pomáha zvýšenie teploty – soľný kúpeľ opísaný nižšie. Účinne potláča krupičku aj malachitová zeleň, no tá vlastne len vylieči symptómy, samotná choroba v zárodkoch zostane, preto ju na liečenie neodporúčam, ale hodia sa liečivá na báze FMC.
Oodinióza – toto ochorenie spôsobuje Piscinoodinium pillularis.
Medzi ťažké choroby rýb, ktoré sú takmer neliečiteľné možno s istotou zaradiť mykobakteriózu – tuberkulózu rýb. Prejavuje sa najmä chorobným chudnutím, prepadnutou brušnou časťou tela, nezáujmom prijímať potravu. Je nutné poznamenať, že toto ochorenie je ako jedno z mála prenosné dotykom na človeka. Ak lekár nepríde na súvis s rybami, môže skončiť aj smrťou pacienta. Čiže v prípade tohto ochorenia, nemanipulujme s rybami rukami, zabráňme styku s postihnutou rybou.
Bakteriálny rozpad plutiev spôsobuje mikroorganizmy Pseudomonas, Aeromonas. Ide o vážnu chorobu, ktorá sa účinne lieči napr. pomocou prípravku Bactopur Direct. Tento prípravok firmy SERA zafarbuje vodu do žltozelena, dôležitejšie však je, že výrazne poškodzuje rastliny, preto pri jeho použití rastliny z akvária odstránime. Často aj napriek liečbe uhynie polovička populácie.
Plesne - následkom nákazy, dochádza na rybách k rôznym preplesňovej nákazy. Pleseň je huba, ktorá v tomto prípade napáda pokožku rýb. Plesne sú pomerne dobre na povrchu viditeľné, niektoré sú liečiteľné Acriflavínom, FMC a podobnými prípravkami, prípadne aj soľou, no niektoré sú vážnejšie a je nutné siahnuť po silnejších prostriedkoch. Chcel by som však upozorniť, že spóry plesní môžu byť prakticky neustále prítomné vo vode, ale chorobný stav sa nemusí prejaviť. Ryby majú imunitný systém, ktorý sa za optimálnych podmienok dokáže brániť. Najmä dravšie ryby, poranené sú účinnejšie napádané plesňami, ale ak je ryba v kondícii, v krátkom čase si s ňou poradí. Preto, ak pozorujeme takéhoto jedinca, nemusíme nutne siahnuť ku liečbe, ale dajme šancu prirodzenému vývinu, zasiahnime až v prípade že sa nákaza šíri, alebo ryby sú oslabené nejakou väčšou zmenou. Náznakom prítomnosti plesňového ochorenia je obtieranie sa o podklad, o piesok, o kamene. Ak registrujeme zvýšené otieranie, zrejme ryby svrbí práve pleseň – týmto spôsobom sa jej snažia zbaviť.
Vodnatieľka – plynatosť. Pomerne vážne ochorenie, ktoré je zväčša spôsobené nesprávnou výživou. Pri podozrení podávajme menej bielkovinových zložiek a viac balastných látok. Prejav ochorenia je však postupný, čiže aj jeho doznenie trvá dlhšie obdobie.
V prípade, že ryba trpí pokročilou formou ťažko liečiteľnej choroby, prípadne sme z nejakého iného veľmi vážneho dôvodu nútený ryby usmrcovať, mali by sme aj k tomuto problému pristupovať profesionálne a s úctou. Existuje viacero humánnych metód, ktorými môžeme vykonať rybu usmrtiť: prudkým úderom ryby o pevný podklad, ponorením do sódovky, minerálky – využijeme silný narkotizačný účinok CO2 vo vyššej koncentrácii, rýchlym prerušením chrbtice – miechy tesne za hlavou ostrým predmetom, veľmi studenou vodou, môžeme si pomôcť napr. ľadom. Liečba Pri liečbe môžeme čiastočne úspešne využiť aktívne uhlie, ktoré adsorbuje množstvo nežiaducich látok, no predovšetkým UV-lampu. Ultrafialové žiarenie má svoje využitie aj v medicíne, takže samozrejme netrvalo dlho a technické riešenie použitia UV-žiarenia nedalo na seba dlho čakať. UV-lampa sa používa buď ako filter, alebo v akútnom prípade priamo na kontaminovanú vodu. Jej účinnosť je pomerne veľká, napr. na druhy baktérii [1] ako je Bacillus megatherium, Clostridium tetami, Dysentery bacilli, Micrococcus candidus, Myxobacterium tuberculosis, Psedomonas aerugenosa, Salmonsella enteritidis, na vírusy, na nálevníka, chlorelu a mnohé iné druhy a taxóny. Veľa liečiv používaných v akvaristike je kontaktného charakteru – čiže ak narazia na vhodný objekt, viažu sa s ním. Zvyčajne sú tekuté. Preto je vhodné zabezpečiť prúdenie vody napríklad pomocou filtra, vzduchovania alebo inak a aplikovať kvapalné liečivo do celého priestoru zasiahnutého chorobou. Často som sa v praxi stretol s používaním preventívnychprostriedkov. Používajú sa špeciálne prípravky na tento účel, a častokrát aj liečivá v nižšej koncentrácii. Som zásadne proti, pretože používaním špeciálnych prípravkov oslabujeme imunitný systém našich rýb, ktoré potom pri silnejšom choroby nie sú schopné nákaze odolávať. Takéto prostriedky potláčajú prirodzenú odolnosť organizmu. Prevenciu zabezpečme iným spôsobom – správnymi podmienkami chovu, výživnou rozmanitou stravou, údržbou. Ak by som uvažoval o použití preventívnych prostriedkov, tak iba keď sú ryby v príliš stresujúcom prostredí – napr. v predajni, prípadne niekde kde dochádza k veľkým zmenám v osádke rýb, nanajvýš ak nechceme použiť pre nové ryby karanténu. V prípade použitia akýchkoľvek rozpustných liečiv musíme uvažovať o odobratí aktívneho uhlia z akvária. Pretože by liečba bola značne neúčinná – aktívne uhlie vo veľkej miere adsorbuje aj zložky obsiahnuté v liečivách. Jeho účinky je vhodné využiť po liečbe, tak ako som už spomenul na inom mieste.
Soľný kúpeľ – soľ je najmä medzi skúsenejšími akvaristami používaný prostriedok na liečenie niektorých chorôb. Napr. na odstránenie tzv. krupičky (1 polievková lyžica na 30 litrov vody) je možné soľ a zvýšenú teplotu úspešne použiť. Soľ spôsobuje zvýšenie vylučovania slizu, ktorým sa organizmus ryby bráni.
FMC – niektoré liečivá sú predávané pod rôznymi obchodnými značkami, no sú to odvodeniny od FMC. FMC má širokospektrálne pôsobenie, obsahuje tri základné zložky: formalín, malachitovú zeleň a metylénovú modrú. Je pomerne účinný voči niektorým ektoparazitom a plesniam.
Hypermangán – manganistan draselný KMnO4 sa používa napr. proti kaprivcovi, proti riasam. Pôsobí dezinfekčne, využíva sa aj v medicíne.
Trypaflavín je príbuzný acriflavínu aj proflavínu.
Proti ektoparazitom sa používa metylénová modrá a malachitová zeleň. Chemicky malachitová zeleň patrí medzi trifenylmetány.
Z ďalších liečiv to je metronidazol – entizol. Komerčne sa FMC ponúka aj pod rovnakým názvom FMC, ale aj napr. ako Multimedikal.
Aj v akvaristike sa využívajú antibiotiká: tetracyklín, streptomycín.
Karanténa Karanténa spočíva v priestorovej izolácii organizmov. Často sa v karanténe ryby liečia z nejakej choroby. Karanténa sa využíva po transporte rýb, to znamená, že ak si kúpime nové ryby môžeme využiť karanténnu nádrž. Ako zariadiť takúto nádrž? V prvom rade ide o jej veľkosť. Musí zodpovedať našim rybám. Na dno použijeme len štrk, prípadne hrubší piesok, alebo môžeme mať karanténnu nádrž bez dna. Filtrovanie, ak by sme ryby liečili by bolo problematické, pretože liečivá nepriaznivo vplývajú na mikroorganizmy v ňom. Preto by som použil len jednoduchý filter, ktorý by plnil mechanickú filtráciu – čiže stačil by vnútorný molitanový filter. Vzduchovanie by som zaviedol, nie je však nutnosťou. Osvetlenie nemusí splňovať najprísnejšie kritériá. Rastliny by som použil len plávajúce, napr. Ceratophyllum demersum, Najas apod. Do karantény sú vhodné aj ryby, ktoré boli ubité inými rybami v nádrži. Niektoré druhy rýb veľmi trpia po izolácii do karantény samotou. Najmä sociálne žijúcim rybám táto izolácia často veľmi urýchli priebeh choroby. Je to veľmi ťažko riešiteľná situácia, kedy takýto jedinci skapú skôr na následky zmeny, ako na chorobu, ktorá ich celý čas kvárila.
Everyone probably knows the phrase: “Healthy as a fish.” May your fish be healthy, but a more experienced aquarist would probably avoid this proverb. Infection germs spread successfully in water and often occur continually. Of course, fish have an immune system that prevents disease. However, this system can be disrupted by various factors, and that’s what we will focus on here. I would like to emphasize once again that, under normal conditions that we should provide them, fish can manage on their own. During an illness, the fish often changes its color depending on the species. It may fade or darken.
If we have reached the point where we cannot avoid disinfection, suitable options include potassium permanganate, vinegar, pure water, a salt and vinegar mixture, and boiling. Higher temperatures affect the condition and immunity of the fish over a longer period, although they may seem better and more beautifully colored in such water at first glance. Fish diseases are difficult to diagnose and treat, especially the internal ones. External diseases, often visible to the naked eye, are also present, although some, despite treatment, can lead to the death of a healthy, well-conditioned fish. Specialized veterinary facilities can also identify the type of disease from dead material. When using medicines, it is often advisable to remove plants from the tank if possible, as medications harm plants explicitly, and their effects are long-term. If this is not possible, it is advisable to use activated carbon after the treatment, which theoretically can bind some of the unbound components of medicines and reaction products. Of course, activated carbon must be removed after some time because it loses its absorption properties. The spread of the disease can be widespread, but it is often tied to a single host. This gives us the opportunity to get rid of the disease at the beginning by moving the affected individual to another tank. If such a parasite successfully overcomes its victim, it will no longer provide it with nutrients, and it will move on or find a new candidate. You may have noticed that your fish are gradually dying one by one over a longer period – this may be the result of just such a course of the disease.
Ichthyophthyriosis – is a fairly common fish disease colloquially called “white spot disease.” It is caused by Ichthyophthirius multifiliis, which belongs to ciliates. Fish are covered with “white spots.” The disease penetrates the aquarium through live food, foreign water, and introduced fish. Increased temperature – a salt bath described below – helps against white spot disease. It is also effective in suppressing white spot with malachite green, but it only cures the symptoms, and the actual disease remains in its early stages, so I do not recommend its use for treatment, but medications based on FMC are suitable.
Oodiniumosis – This disease is caused by Piscinoodinium pillularis.
Among the severe fish diseases that are almost incurable, we can certainly include mycobacteriosis – fish tuberculosis. It manifests mainly through pathological emaciation, a sunken abdominal area, and disinterest in food intake. It is necessary to note that this disease, like one of the few, can be transmitted to humans by touch. So, in the case of this disease, let’s not manipulate fish with our hands, avoid contact with an affected fish.
Bacterial fin rot is caused by microorganisms Pseudomonas, Aeromonas. It is a serious disease that can be effectively treated, for example, with the product Bactopur Direct. This SERA product stains the water yellowish-green, but more importantly, it significantly damages plants, so when using it, remove plants from the aquarium. Often, despite treatment, about half of the population may die.
Fungi – As a consequence of infection, various fungal infections occur on fish. Fungi attack the skin of fish in this case. Some fungi are quite treatable with acriflavine, FMC, and similar preparations, or even with salt. However, some are more serious, and stronger agents may be needed. However, I would like to point out that fungal spores can be practically present in the water all the time, but the diseased condition may not manifest itself. Fish have an immune system that, under optimal conditions, can defend itself. Especially aggressive fish are more effectively attacked by fungi if injured, but if the fish is in good condition, it will cope with it in a short time. Therefore, if we observe such an individual, we do not necessarily have to resort to treatment. Give a chance for natural development; intervene only if the infection is spreading, or the fish are weakened by some significant change.
Hydrops – Gas saturation. A relatively serious disease, which is mostly caused by improper nutrition. In case of suspicion, we should provide less proteinaceous components and more fibrous substances. The manifestation of the disease, however, is gradual, so its culmination takes a longer period.
Malawi bloat – a disease of African lake cichlids – deserves a separate article.
In case a fish suffers from an advanced form of a highly incurable disease, or if we are forced to euthanize fish for some other very serious reason, we should approach this issue professionally and with respect. There are several humane methods by which we can euthanize a fish: by a sharp blow of the fish against a solid surface, immersion in soda, mineral water – we use the strong narcotic effect of CO2 in a higher concentration, a quick break of the spine – the spinal cord just behind the head with a sharp object, very cold water, we can use ice, for example. Treatment During treatment, we can partially use activated carbon, which adsorbs many unwanted substances, but especially UV lamp. Ultraviolet radiation also has its uses in medicine, so it didn’t take long for a technical solution to the use of UV radiation to appear. The UV lamp is used either as a filter or directly on contaminated water in case of acute treatment. Its effectiveness is quite significant, for example, against bacterial species [1] such as Bacillus megatherium, Clostridium tetani, Dysentery bacilli, Micrococcus candidus, Myxobacterium tuberculosis, Psedomonas aerugenosa, Salmonella enteritidis, against viruses, ciliates, chlorella, and many other species and taxa. Many medicines used in aquaristics are contact in nature – that is, if they encounter a suitable object, they bind to it. They are usually liquid. Therefore, it is advisable to ensure water circulation in some way, such as filtration, aeration, or otherwise, and apply liquid medicine to the entire area affected by the outbreak. I have often encountered the use of preventive measures. There are special preparations for this purpose, and often medications in lower concentrations. I am fundamentally against it because by using special preparations, we weaken the immune system of our fish, which then cannot resist infection in more severe conditions. Such means suppress the natural resistance of the body. Prevention should be ensured in another way – through proper breeding conditions, diverse nutrition, and maintenance. If I were to consider using preventive means, only when the fish are in a too stressful environment – for example, in a store or somewhere where there are large changes in fish stocking, at most if we don’t want to use quarantine for new fish. When using any soluble medicines, we must consider removing active carbon from the aquarium. Because the treatment would be largely ineffective – activated carbon adsorbs to a large extent also the components contained in the medicines. Its effects should be used after treatment, as I mentioned elsewhere.
Salt bath – salt is used especially by more experienced aquarists as a remedy for some diseases. For example, to remove the so-called white spot (1 tablespoon per 30 liters of water), salt and increased temperature can be successfully used. Salt causes an increase in mucus secretion, with which the fish organism fights.
FMC – some medicines are sold under various trade names but are derivatives of FMC. FMC has a broad spectrum of action and contains three basic components: formalin, malachite green, and methylene blue. It is quite effective against some ectoparasites and fungi.
Potassium permanganate – potassium permanganate KMnO4 is used, for example, against carp pox, against algae. It acts disinfectant, and it is also used in medicine.
Trypaflavin is a relative of acriflavine and proflavine.
Against ectoparasites, methylene blue and malachite green are used. Chemically malachite green belongs to triphenylmethanes.
Other medicines include metronidazole – entizol. FMC is also commercially available under the same name FMC, but also, for example, as Multimedical.
Antibiotics are also used in aquaristics: tetracycline, streptomycin.
Quarantine Quarantine consists of the spatial isolation of organisms. Often, fish are treated in quarantine for some disease. Quarantine is used after transporting fish, that is, if we buy new fish, we can use the quarantine tank. How to arrange such a tank? First of all, it’s about its size. It must correspond to our fish. On the bottom, we use only gravel, possibly coarser sand, or we can have a quarantine tank without a bottom. Filtration, if we treat fish, would be problematic because drugs adversely affect microorganisms in it. Therefore, I would only use a simple filter that would perform mechanical filtration – an internal foam filter would be sufficient. Aeration would I introduce, but is not a necessity. Lighting does not have to meet the strictest criteria. Plants must only be floating, such as Ceratophyllum demersum, Najas, etc. Quarantine is also suitable for fish that were attacked by other fish in a tank. Some fish species suffer greatly after isolation in quarantine. In particular, socially living fish often suffer greatly from the accelerated course of the disease after isolation. It is a very difficult situation to solve, where such individuals die rather from the consequences of the change than from the disease that has been tormenting them all the time.
Jeder kennt wahrscheinlich den Satz: “Gesund wie ein Fisch”. Möge es Ihren Fischen gut gehen, aber erfahrene Aquarianer würden diesem Sprichwort wahrscheinlich ausweichen. Infektionskeime verbreiten sich im Wasser erfolgreich und treten oft und regelmäßig auf. Natürlich verfügen Fische über ein Immunsystem, das das Eindringen von Krankheiten verhindert. Dieses System kann jedoch durch verschiedene Faktoren gestört werden, und darauf werden wir hier eingehen. Ich möchte jedoch erneut betonen, dass Fische unter normalen Bedingungen, die wir ihnen bieten sollten, in der Lage sind, selbst zurechtzukommen. Während einer Krankheit ändert der Fisch oft seine Farbe, abhängig von der Art. Es kann verblassen oder verdunkeln.
Wenn wir den Punkt erreicht haben, dass wir nicht auf Desinfektion verzichten können, ist Kaliumpermanganat, Essig, reines Wasser, eine Mischung aus Salz und Essig, das Kochen geeignet. Eine höhere Temperatur beeinträchtigt über einen längeren Zeitraum die Kondition und Immunität der Fische, obwohl sie sich in solchem Wasser auf den ersten Blick besser fühlen und schöner gefärbt sind. Fischkrankheiten sind schwer zu diagnostizieren und zu heilen, besonders die inneren. Äußere Krankheiten, die oft mit bloßem Auge erkennbar sind, sind jedoch auch darunter, obwohl es auch solche gibt, die trotz Behandlung zu einem gesunden, gut konditionierten Fischsterben können. Interne Krankheiten erkennen wir oft durch Verhaltensänderungen oder erst nach dem Tod. Spezialisierte veterinärmedizinische Einrichtungen können auch die Art der Krankheit aus totem Material identifizieren. Bei der Verwendung von Medikamenten ist es oft ratsam, Pflanzen aus dem Aquarium zu entfernen, wenn möglich. Denn Medikamente schaden Pflanzen ausdrücklich, und ihre Wirkungen sind langfristig. Wenn dies nicht möglich ist, ist es nach Abschluss der Behandlung ratsam, Aktivkohle zu verwenden, die theoretisch etwas von den ungebundenen Bestandteilen von Arzneimitteln und den von ihnen verursachten Reaktionsprodukten binden kann. Nach einiger Zeit muss natürlich auch die Aktivkohle entfernt werden, da sie ihre adsorbierenden Eigenschaften verliert. Die Ausbreitung der Krankheit kann flächendeckend sein, ist aber oft an einen einzigen Wirt gebunden. Dies gibt uns die Möglichkeit, die Krankheit zu Beginn durch Verlegen des infizierten Individuums in ein anderes Aquarium loszuwerden. Wenn es diesem Parasiten gelingt, sein Opfer erfolgreich zu überwinden, wird es diesem keine Nahrung mehr geben, und es wird zu einem neuen Kandidaten wechseln oder einen suchen. Vielleicht haben Sie schon einmal bemerkt, dass Ihre Fische unbemerkt über einen längeren Zeitraum nach und nach sterben – das kann ein Ergebnis genau dieses Krankheitsverlaufs sein.
Ichthyophthiriose – ist eine ziemlich häufige Fischkrankheit, umgangssprachlich als Weißpünktchenkrankheit bezeichnet. Es wird von Ichthyophthirius multifilis verursacht, der zu den Ciliaten gehört. Fische sind mit “Weißpünktchen” bedeckt. Die Krankheit gelangt durch Lebendfutter, fremdes Wasser, mitgebrachte Fische ins Aquarium. Gegen Weißpünktchen hilft eine Temperaturerhöhung – ein Salzbad, das weiter unten beschrieben wird. Es unterdrückt Weißpünktchen auch wirksam mit Malachitgrün, heilt jedoch nur die Symptome, die eigentliche Krankheit bleibt in den Anfängen erhalten, daher rate ich nicht zur Verwendung zur Behandlung, sondern es gibt Medikamente auf FMC-Basis.
Oodiniumose – Diese Krankheit wird durch Piscinoodinium pillularis verursacht.
Zu den schweren Fischkrankheiten, die fast unheilbar sind, gehört sicherlich die Mykobakteriose – die Fischtuberkulose. Es zeigt sich hauptsächlich durch krankhafte Abmagerung, eingefallenen Bauchbereich, Desinteresse am Futter. Es ist zu beachten, dass diese Krankheit wie eine der wenigen berührungsempfindlich auf den Menschen übertragen werden kann. Wenn der Arzt keine Verbindung zu Fischen herstellt, kann dies auch zum Tod des Patienten führen. Daher sollten wir in diesem Fall, in dem wir so schwerwiegende Erkrankungen in Betracht ziehen, professionell und respektvoll vorgehen. Es gibt mehrere humane Methoden, mit denen wir einen Fisch töten können: einen scharfen Schlag des Fisches auf einen festen Untergrund, Eintauchen in Soda, Mineralwasser – wir nutzen die starke narkotisierende Wirkung von CO2 in höherer Konzentration, ein schnelles Brechen des Rückgrats – das Rückgrat kurz hinter dem Kopf mit einem scharfen Gegenstand, sehr kaltes Wasser, wir können zum Beispiel Eis verwenden. Behandlung Bei der Behandlung können wir teilweise erfolgreich Aktivkohle verwenden, die viele unerwünschte Substanzen adsorbiert, aber vor allem UV-Licht. Ultraviolette Strahlung findet auch in der Medizin Anwendung, daher dauerte es natürlich nicht lange, bis die technische Lösung für die Verwendung von UV-Strahlung bereitstand. UV-Lampe wird entweder als Filter oder im akuten Fall direkt auf das kontaminierte Wasser angewendet. Ihre Effektivität ist ziemlich hoch, zum Beispiel gegen bestimmte Bakterien [1] wie Bacillus megatherium, Clostridium tetami, Dysenteriebakterien, Micrococcus candidus, Myxobacterium tuberculosis, Psedomonas aerugenosa, Salmonella enteritidis, gegen Viren, gegen Ciliaten, Chlorella und viele andere Arten und Taxa. Viele in der Aquaristik verwendete Heilmittel haben einen Kontaktcharakter – dh wenn sie auf ein geeignetes Objekt stoßen, binden sie sich daran. Sie sind in der Regel flüssig. Daher sollten wir für eine ausreichende Wasserzirk
ulation sorgen, sei es durch Filtration, Belüftung oder auf andere Weise, und das flüssige Arzneimittel auf den gesamten vom Krankheitsausbruch betroffenen Bereich anwenden. Ich bin oft auf die Verwendung von vorbeugenden Mitteln gestoßen. Es gibt spezielle Präparate für diesen Zweck, und oft auch Medikamente in niedrigerer Konzentration. Ich bin grundsätzlich dagegen, weil wir durch die Verwendung spezieller Präparate das Immunsystem unserer Fische schwächen, die dann bei schwereren Krankheiten der Infektion nicht widerstehen können. Solche Mittel unterdrücken die natürliche Widerstandsfähigkeit des Organismus. Die Vorbeugung sollte auf andere Weise sichergestellt werden – durch richtige Haltungsbedingungen, abwechslungsreiche Ernährung und Wartung. Wenn ich über die Verwendung vorbeugender Mittel nachdenken würde, dann nur, wenn die Fische in einer zu stressigen Umgebung sind – z. B. im Geschäft oder an einem Ort, an dem sich die Fischbesatzung stark ändert, höchstens wenn wir keine Quarantäne für neue Fische verwenden möchten. Bei der Verwendung von auflösbaren Arzneimitteln müssen wir darüber nachdenken, ob wir die Aktivkohle aus dem Aquarium entfernen sollten. Denn die Behandlung wäre weitgehend unwirksam – Aktivkohle adsorbiert in hohem Maße auch die in den Arzneimitteln enthaltenen Bestandteile. Ihre Wirkungen sollten nach der Behandlung genutzt werden, wie ich bereits an anderer Stelle erwähnt habe.
Salzbad – Salz wird vor allem von erfahreneren Aquarianern als Mittel zur Behandlung einiger Krankheiten verwendet. Zum Beispiel zur Entfernung von sogenannten Weißpünktchen (1 Esslöffel pro 30 Liter Wasser) kann Salz und erhöhte Temperatur erfolgreich verwendet werden. Das Salz verursacht eine Erhöhung der Schleimsekretion, mit der der Organismus des Fisches kämpft.
FMC – einige Medikamente werden unter verschiedenen Handelsnamen verkauft, sind aber Derivate von FMC. FMC hat ein breites Wirkungsspektrum und enthält drei Hauptbestandteile: Formalin, Malachitgrün und Methylenblau. Es ist ziemlich effektiv gegen einige Ektoparasiten und Pilze.
Kaliumpermanganat – Kaliumpermanganat KMnO4 wird zum Beispiel gegen Karpfenpocken, gegen Algen verwendet. Es wirkt desinfizierend und wird auch in der Medizin eingesetzt.
Trypaflavin ist ein Verwandter von Acriflavin und Proflavin.
Gegen Ektoparasiten werden Methylblau und Malachitgrün verwendet. Malachitgrün gehört chemisch zu den Triphenylmethanen.
Zu den weiteren Medikamenten gehört Metronidazol – Entizol. Kommerziell wird FMC auch unter dem gleichen Namen FMC angeboten, aber auch z. B. als Multimedical.
In der Aquaristik werden auch Antibiotika eingesetzt: Tetracyclin, Streptomycin.
Quarantäne Die Quarantäne besteht in der räumlichen Isolation von Organismen. Oft werden Fische in der Quarantäne gegen eine bestimmte Krankheit behandelt. Die Quarantäne wird nach dem Transport von Fischen verwendet, das heißt, wenn wir neue Fische kaufen, können wir das Quarantänebecken verwenden. Wie richte ich ein solches Becken ein? Vor allem geht es um seine Größe. Es muss unseren Fischen entsprechen. Am Boden verwenden wir nur Kies, gegebenenfalls groben Sand oder können ein Quarantänebecken ohne Boden haben. Die Filtration wäre schwierig, wenn wir Fische behandeln würden, weil Arzneimittel einen nachteiligen Einfluss auf die Mikroorganismen darin haben. Daher würde ich nur einen einfachen Filter verwenden, der die mechanische Filtration erfüllt – ein interner Schaumstofffilter würde ausreichen. Belüftung würde ich einführen, ist aber keine Notwendigkeit. Die Beleuchtung muss nicht den strengsten Kriterien entsprechen. Pflanzen müssen nur schwimmend sein, z. B. Ceratophyllum demersum, Najas usw. In die Quarantäne können auch Fische gestellt werden, die von anderen Fischen in einem Becken angegriffen wurden. Einige Fischarten leiden sehr unter der Isolierung in die Quarantäne. Insbesondere sozial lebende Fische leiden oft sehr unter dem beschleunigten Verlauf der Krankheit nach der Isolation. Es handelt sich um eine sehr schwer zu lösende Situation, in der solche Individuen eher an den Folgen der Veränderung sterben als an der Krankheit, die sie die ganze Zeit gequält hat.
![Tropheus Phylog[1]](https://www.sozo.sk/wp/pressf/wp-content/blogs.dir/6/grand-media/image/tropheus_phylog_1_.jpg "Tropheus Phylog[1]")
